特地唑胺对利奈唑胺不敏感革兰阳性球菌的体外抗菌活性研究.pdf
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1、:临床实验研究特地唑胺对利奈唑胺不敏感革兰阳性球菌的体外抗菌活性研究高硕,徐学静,纪玥玥,贾佳,张燕,周万青,沈瀚(南京大学医学院附属鼓楼医院检验科,南京)摘要:目的 检测利奈唑胺不敏感革兰阳性球菌对新型噁唑烷酮类抗菌药物特地唑胺的敏感性,并探讨特地唑胺不敏感菌株的耐药机制。方法 收集临床分离非重复革兰阳性球菌 株,包括利奈唑胺耐药头状葡萄球菌 株、利奈唑胺敏感头状葡萄球菌 株、利奈唑胺不敏感肠球菌 株、利奈唑胺敏感肠球菌 株、甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌 株、甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌 株、利奈唑胺耐药金黄色葡萄球菌 株。采用微量肉汤稀释法检测所有菌株对特地唑胺和利奈唑胺的最小抑菌浓度(),并
2、比较两种药物的抗菌活性。采用 结合 测序技术分析特地唑胺不敏感革兰阳性球菌、基因携带情况及 区突变。结果 利奈唑胺耐药头状葡萄球菌()对特地唑胺的 值为 ;利奈唑胺不敏感肠球菌(值 )中,特地唑胺的敏感率为,其 值为 ;株利奈唑胺耐药金黄色葡萄球菌对特地唑胺敏感,值为 。特地唑胺对利奈唑胺敏感的金黄色葡萄球菌和肠球菌的 值均为 ,对利奈唑胺敏感头状葡萄球菌的 值为 。耐药基因分析显示,特地唑胺耐药头状葡萄球菌 基因携带率为(),区 的突变率为;特地唑胺不敏感肠球菌 基因携带率为(),显著高于特地唑胺敏感株的();株利奈唑胺耐药特地唑胺敏感的金黄色葡萄球菌携带 基因。结论 对于利奈唑胺不敏感的革
3、兰阳性球菌,特地唑胺的抗菌活性是利奈唑胺的 倍,其耐药机制可能与携带 基因及 区 突变有关。关键词:特地唑胺;利奈唑胺;革兰阳性球菌;抗菌活性;耐药机制中图分类号:文献标志码:,(,):,(),(),(),(),(),()()(),()(:),(),(),(,),:;临床检验杂志 年 月第 卷第 期 ,基金项目:南京大学中国医院改革发展研究院课题;南京鼓楼医院医学发展医疗救助基金会资助项目()。作者简介:高硕,年生,女,主管技师,硕士,主要从事微生物耐药机制研究。通信作者:周万青,副主任技师,:。利奈唑胺作为第一代噁唑烷酮类抗菌药物,能有效的治疗革兰阳性菌感染,尤其对甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌
4、(,)以及万古霉素耐药肠球菌(,)等。然而利奈唑胺耐药菌株的出现,给临床治疗带来了严峻的挑战。年中国细菌耐药监测网()数据显示,甲氧西林耐药凝固酶阴性葡萄球菌对利奈唑胺的耐药率为,粪肠球菌对利奈唑胺的耐药率达。此外,利奈唑胺存在单胺氧化酶抑制作用及潜在的血液和骨髓毒性作用。因此,亟需寻找新型抗菌药物以应对难治性感染。特地唑胺为第二代噁唑烷酮类抗菌药物,年,磷酸特地唑胺获得美国食品药品监督管理局()批准,可用于临床成人急性细菌性皮肤及皮肤结构感染的治疗。与利奈唑胺相比,特地唑胺表现出更强的体外抗菌活性,同时具有生物利用度高、不良反应小等优点。然而,特地唑胺对于利奈唑胺耐药革兰阳性菌株的抗菌作用和
5、耐药机制仍缺少大量的研究数据。细菌对噁唑烷酮类抗菌药物耐药主要由 区 突变,以及由、及 等基因介导。本研究通过筛选临床分离利奈唑胺不敏感的葡萄球菌和肠球菌,采用微量肉汤稀释法比较利奈唑胺和特地唑胺的体外抗菌活性,同时对菌株可能的耐药机制进行探讨,以期为特地唑胺的临床应用提供实验室的参考依据。材料和方法 菌株来源 收集并筛选南京鼓楼医院 至 年临床分离非重复革兰阳性球菌共 株,菌株分离自临床血液、尿液、胸腹水、分泌物、胆汁、引流液及导管头样本。采用 全自动微生物分析仪进行菌种鉴定并经 质谱分析复核,采用 及配套 卡进行常规药物敏感性检测。参照美国临床和实验室标准化协会()年标准,依据菌株对利奈唑
6、胺初筛最小抑菌浓度()值,共纳入利奈唑胺耐药头状葡萄球菌(,)株、利奈唑胺敏感头状葡萄球菌(,)株、利奈唑胺不敏感肠球菌(,)株、利奈唑胺敏感肠球菌(,)株、甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌(,)株、甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌(,)株、利奈唑胺耐药金黄色葡萄球菌(,)株。金黄色葡萄球菌、粪肠球菌 为本实验室保存菌株。主要仪器和试剂 全自动鉴定药敏分析仪及配套 鉴定卡、药敏卡、质谱分析及配套试剂(法国生物梅里埃公司),扩增仪、电泳仪(美国 公司),型凝胶成像系统(上海 公司),基因测序仪(美国 公司)。利奈唑胺和特地唑胺原药药物(美国 公司),孔微量稀释板(美国 公司),肉汤(英国 公司),二甲基亚砜
7、(德国 公司,采用 溶解利奈唑胺和特地唑胺药物并制备储存液),(上海近岸蛋白质科技公司),琼脂粉 (西班牙 公司),(北京索莱宝科技公司)。引物合成及序列测定由上海生工生物工程公司完成。体外药物敏感试验 根据美国临床和实验室标准化协会()文件要求,采用微量肉汤稀释法检测特地唑胺和利奈唑胺对 株革兰阳性球菌的 值。采用 溶解药物并制备浓度为 的储存液,经 肉汤倍比稀释,获得 浓度范围。挑取过夜培养的血平板上菌落,生理盐水调整菌液浊度为 麦氏单位,再用 肉汤调整菌液浓度为,将不同浓度药物和菌液各 加入 孔微量稀释板中,混匀后置于 培养。设置菌液对照孔和空白对照孔,金黄色葡萄球菌()和粪肠球菌()作
8、为药敏试验质控菌株。根据 文件中抗微生物药敏试验执行标准,利奈唑胺药物敏感折点:葡萄球菌 为敏感,为耐药;肠 球 菌 为 敏 感,为中介,为耐药。特地唑胺药物敏感性试验折点:金黄色葡萄球菌 为敏感,为中介,为耐药;粪肠球菌 为敏感。头状葡萄球菌参考 标准,为敏感。耐药基因扩增及测序参照文献合成临床检验杂志 年 月第 卷第 期 ,基因、基因以及 功能区基因扩增引物,引物序列见表。采用 反应对特地唑胺敏感株和耐药株进行目的基因扩增,总反应体系为 ,包括 ,模板,上、下游引物()各 ,。反应条件:;,共 个循环;。产物经 琼脂糖凝胶电泳,阳性扩增产物纯化后采用 基因测序仪进行 双向测序(由上海生工生
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