实验室啤酒发酵实验讲义[1].docx

实验室啤酒发酵讲义

一、 实验目的：熟悉静止培养操作，观察啤酒发酵过程，掌握发酵过程中一些指标的分析操作技能。
二、 实验原理：啤酒酵母将麦芽汁发酵，产生酒精等发酵产物（啤酒）。
三、实验器材：
⑴. 100升发酵罐。
⑵. 0~10O BX糖度表。
(3).10℃-30℃可调生化培养箱。
培养基：
⑴. 麦芽汁发酵培养基10 Plato, 50升，糖化制取。
⑵. 麦芽汁琼脂培养基：麦芽汁加2％琼脂，自然pH。
⑶. 麦芽汁液体培养基：酵母扩大培养用。
菌种：啤酒生产用酵母菌株。
四、实验步骤：
（1）麦汁制备
（2）酵母菌种分离纯化与质量鉴定
（3）菌种扩大培养
（4）啤酒主发酵：麦汁50升，10OBX ，11℃→接种量1.5×107个细胞/mL →主发酵，11℃，5~7天→至4.0OBX时结束（嫩啤酒）。在主发酵过程中，每天测定下列项目：糖度、细胞浓度、出芽率、染色率、酸度、α-氨基氮、还原糖、酒精度 、pH、双乙酰。然后以时间为横坐标，这些指标为纵坐标，叠画于方格纸上。
（5）后发酵
五、作业要求
（1）. 画出发酵周期中上述上述指标的曲线图，并解释它们的变化。
（2）. 记下操作体会与注意点。

实验一 协定法糖化试验

一、实验目的：协定法糖化试验是欧洲啤酒酿造协会（EBC）推荐的评价麦芽质量的标准方法，我们用该法进行小量麦芽汁制备，并借此评价所用麦芽的质量。
二、实验原理：利用麦芽所含的各种酶类将麦芽中的淀粉分解为可发酵性糖类，蛋白质分解为氨基酸（具体参见理论部分第二节）。
三、实验器材和试剂：
1 实验室糖化器：由水浴和500~600 mL的烧杯组成糖化仪器，杯内用玻棒搅拌或用100℃温度计作搅拌器（此时搅拌应十分小心，以免敲碎水银头）。实验时杯内液面应始终低于水浴液面。最好采用专用糖化器：该仪器有一水浴，水浴本身有电热器加热和机械搅拌装置。水浴上有4~8个孔，每个孔内可放一糖化杯，糖化杯由紫铜或不锈钢制成，每一杯内都带有搅拌器，转速为80~100转/分，搅拌器的螺旋桨直径几乎与糖化杯同，但又不碰杯壁，它离杯底距离只有1~2 mm。
2 白色滴板或瓷板，玻棒或温度计。
3 滤纸，漏斗，电炉。
4 碘溶液，0.02N： 2.5克碘和5克碘化钾溶于水中，稀释到1000毫升。
四、实验步骤
1. 协定法糖化麦汁的制备
（1）取50g麦芽，用植物粉碎机将其粉碎。
（2）在已知重量的糖化杯（500~600 mL烧杯或专用金属杯）中，放入50g麦芽粉，加200mL 46~47℃的水，于不断搅拌下在45℃水浴中保温30分钟。
（3）使醪液以每分钟升温1℃的速度，升温加热水浴，在25分钟内升至70℃。此时于杯内加入100 mL 70℃的水。
（4）70℃保温1小时后，在10~15分钟内急速冷却到室温。
（5）冲洗搅拌器。擦干糖化杯外壁，加水使其内容物准确称量为450g。
（6）用玻棒搅动糖化醪 ，并注于干漏斗中进行过滤，漏斗内装有直径20厘米的折叠滤纸，滤纸的边沿不得超出漏斗的上沿。
（7）收集约100mL滤液后，将滤液返回重滤。过30分钟后，为加速过滤可用一玻棒稍稍搅碎麦槽层。将整个滤液收集于一干烧杯中。在进行各项试验前，需将滤液搅匀。
2. 糖化时间的测定
⑴ 在协定法糖化过程中，糖化醪温度达70℃时记录时间，5分钟后用玻棒或温度计取麦芽汁1滴，置于白滴板（或瓷板）上，再加碘液1滴，混合，观察颜色变化。
⑵ 每隔5分钟重复上述操作，直至碘液呈黄色（不变色）为止，记录此时间。
由糖化醪温度达到70℃开始至糖化完全无淀粉反应时止，所需时间为糖化时间。报告以每5分钟计算：
如 <10分钟
10~15分钟
15~20分钟等
正常范围值
浅色麦芽：15分钟内
深色麦芽：35分钟内
3. 过滤速度的测定
以从麦汁返回重滤开始至全部麦芽汁滤完为止所需的时间来计算，以快、正常和慢等来表示，1小时内完成过滤的规定为“正常”，过滤时间超过1小时的报告为“慢”。
4. 气味的检查
糖化过程中注意糖化醪的气味。具有相应麦芽类型的气味规定为“正常’,因此对深色麦芽若有芳香味，应报以“正常”；若样品缺乏此味，则以“不正常”表示，其它异味亦应注明。
5. 透明度的检查
麦汁的透明度用透明、微雾、雾状和混浊表示。
6. 蛋白质凝固情况检查
强烈煮沸麦芽汁5分钟，观察蛋白质凝固情况。在透亮麦芽汁中凝结有大块絮状蛋白质沉淀，记录为“好”；若蛋白质凝结细粒状，但麦汁仍透明清亮，则记录为“细小”；若虽有沉淀形成，但麦芽汁不清，可表示为“不完全”；若没有蛋白质凝固，则记录为“无”。
五、注意事项：
粉碎最好用EBC粉碎机，若用1号筛粉碎，细粉约占90%，用2号筛粉碎细粉约占25%。对溶解度好的麦芽，建议用2号筛。因为细粉太多影响过滤速度。
一般要求粗粒与细粒(包括细粉)的比例达1：2.5以上。麦皮在麦汁过滤时形成自然过滤层，因而要求破而不碎。如果麦皮粉碎过细，不但会造成麦汁过滤困难，而且麦皮中的多酚、色素等溶出量增加，会影响啤酒的色泽和口味。但麦皮粉碎过粗，难以形成致密的过滤层，会影响麦汁浊度和得率。麦芽胚乳是浸出物的主要部分，应粉碎得细些。
为了使麦皮破而不碎，最好稍加回潮后进行粉碎。
六、思考题：糖化过程中麦芽中各种酶的作用。

实验二 啤酒酵母纯种分离

一、 实验目的：学习酵母菌种的纯种分离技术
二、实验原理：关于纯种分离，在基础微生物学实验中已学过稀释分离法和划线分离法，这里不再重复。这两种方法虽然简单，但并不能保证分离所得种的纯度。而单细胞分离法因可用显微镜直接检查，其纯度能得到充分保证。
林德奈单细胞分离法，即小滴培养法，是将酵母菌液充分稀释至每一小滴差不多含一个酵母细胞，然后在显微镜下确证只含一个细胞的小滴，经适当培养后，扩大保存。

盖玻片上小滴点样示意图 凹载片上湿室小滴培养适宜图

三、实验器材与试剂：显微镜，凹载玻片，计数板，盖玻片等。
四、实验步骤：
1. 取2块盖玻片，用分析天平称重（精确至0.1mg）后，在一块盖玻片（最好用血球计数板的盖玻片）上用毛细滴管滴上9滴酵母培养基，合上另一玻片，再称重，计算每滴培养基的体积。
2. 用计数板计数酵母菌，用培养基对其进行高倍稀释，稀释至每滴培养基中大致含一个酵母菌。
3. 在已灭菌的盖玻片上滴上酵母稀释液（每张玻片可滴9滴），放于已灭菌的凹载玻片上，显微镜下观察，找到只含一个酵母菌的小滴，做上记号。
4. 30℃培养一定时间后（应放于湿室中），用无菌滤纸片吸走标记的酵母菌，进行扩大培养和菌种保藏。
五、注意事项：因小滴易干，操作时动作要快，培养时要用湿室。
六、思考题：称重时为什么要用两块盖玻片？是否可以用微量移液器（如1微升）来代替称重？

实验三 啤酒酵母的计数

一、实验目的：学习用血球计数板计数酵母数量的方法，
二、 实验原理：啤酒发酵时，必须接入一定数量的酵母细胞；在发酵过程中，为了跟踪发酵的进程，判断发酵是否正常，也有必要测定悬浮酵母细胞的浓度。酵母菌的计数常用血球计数板方法。血球计数板是一块长方形的玻璃板，被四条凹槽分隔成三个部分，中间部分又被一横槽隔成上下两半，每一半上各刻有一个方格网，方格网的边长为3mm,分为9个正方形大格，每一大格为1mm2,其中中间那个大格被横向和纵向的双线分成25（或16）个中格，每个中格又被单线分成16（或25）个小格，因此一个大格中共有25×16=400个小格。这样的一个大格就是一个计数室。由于计数室比板表面要低0.1mm,因此盖上盖玻片后，整个计数室的容积就是0.1 mm3,相当于0.0001mL。
计数时，先让计数室中充满待检溶液，然后计数400个小格中的细胞总数，就可换算出1mL发酵液中的总菌数。
三、实验器材：显微镜，血球计数板，盖玻片等。
四、实验步骤：
1. 取清洁的血球计数板一块，平放于桌面上，在计数室上方加盖专用盖玻片；
2. 取酵母菌液（发酵液）一小滴，滴至盖玻片的边缘，让菌液渗入计数室内，注意计数室内不能留有气泡。
3. 静置5分钟，让酵母细胞稳定附着于计数室内；
4. 将计数板置于显微镜的载物台上，先用低倍镜找到计数板的方格网，并移至视野中间（寻找时可通过缩小光圈，降低聚光镜，开低电源电压等方式减少进光量，使视野稍偏暗）；
5. 找到计数室位置（中间一个大方格），并看清由双线包围的中方格（16或25格）及由单线包围的小方格（共400格）；
6. 计数大格内的酵母细胞总数，必要时可在高倍镜下观察。
若酵母细胞过多，可采取
（1）：稀释后再计数；
（2）：有代表性地选择左上，左下，右上，右下，中间五个中方格，计数其内的菌数，求得每个中格的平均值，然后乘以中方格数（25或16），即得每个大格内的细胞总数；
（3）：在上述5个中方格中选择处于顶角的4个小方格，计数，计算20个小方格中的总菌数，再乘以20，即得大格内的细胞总数。
7. 计算：
酵母细胞数/mL=大格中的细胞总数×10000×稀释倍数
8. 血球计数板的清洗：
将血球计数板立即用流水冲洗干净，若菌液变干，酵母细胞被固定在计数板上，则很难用流水冲洗干净，必须用优质脱脂棉湿润后轻轻擦洗，再用流水冲洗干净，凉干
五、注意事项：
1. 血球计数板的计数室内刻度非常精细，清洗时切勿用试管刷或其它粗糙物品擦拭。
2. 加样前，应先放好盖玻片，让菌液自然吸入。如果先加菌液，则由于盖玻片较轻，可能会浮在菌液上，这样，计数室内的容积就不再使0.0001mL了。因此，为了使结果更加准确，最好不要用普通的盖玻片来替代。
3. 计数时，为避免重复或遗漏，对压在方格线上的细胞，应遵循数上不数下，数左不数右的原则（即凡压在上部或左面线上的细胞，都应计数入内，凡压在下部或右面线上的菌体，都应忽略不计）。对出芽细胞，如果子细胞大于母细胞的一半，则应算作两个细胞。
六、思考题：
计数时，发现计数板不干净，怎样快速地清洗计数板？

实验三 啤酒酵母的质量检查

一、实验目的：学习酵母菌种的质量鉴定方法，
二、实验原理：酵母的质量直接关系到啤酒的好坏。酵母活力强，发酵就旺盛；若酵母被污染或发生变异，酿制的啤酒就会变味。因此，不论在酵母扩大培养过程中，还是在发酵过程中，必须对酵母质量进行跟踪调查，以防产生不正常的发酵现象，必要时对酵母进行纯种分离，对分离到的单菌落进行发酵性能的检查。
三、实验器材与试剂：显微镜，恒温水浴，温箱，高压蒸汽灭菌锅，带刻度的锥形离心管等
0. 025%美兰（又称次甲基兰，Methylene blue）水溶液：0.025g美兰溶于100mL水中；
pH4.5的醋酸缓冲液：0.51g硫酸钙，0.68g硫酸钠，0.405g冰醋酸溶于100mL水中；
醋酸钾（钠）培养基：葡萄糖 0.06%，蛋白胨 0.25%， 醋酸钾（钠） 0.5%，琼脂 2%， pH 7.0。
四、实验步骤：
1. 显微形态检查
载玻片上放一小滴蒸馏水，挑酵母培养物少许，盖上盖玻片，在高倍镜下观察。优良健壮的酵母菌，应形态整齐均匀，表面平滑，细胞质透明均一。年幼健壮的酵母细胞内部充满细胞质；老熟的细胞出现液泡，呈灰色，折光性较强；衰老的细胞中液泡多，颗粒性贮藏物多，折光性强。
2. 死亡率检查
方法同上，可用水浸片法，也可用血球计数板法。酵母细胞用0.025%美兰水溶液染色后，由于活细胞具有脱氢酶活力，可将兰色的美兰还原成无色的美白，因此染不上颜色，而死细胞则被染上兰色。
一般新培养酵母的死亡率应在1%以下，生产上使用的酵母死亡率在3%以下。
3. 出芽率检查
指出芽的酵母细胞占总酵母细胞数的比例。随机选择5个视野，观察出芽酵母细胞所占的比例，取平均值。一般生长健壮的酵母在对数生长阶段出芽率可达60%以上。
4. 凝集性试验
对下面发酵来说，凝集性的好坏牵涉到发酵的成败。若凝集性太强，酵母沉降过快，发酵度就太低；若凝集性太弱，发酵液中悬浮有过多的酵母菌，对后期的过滤会造成很大的困难，啤酒中也可能会有酵母味，
凝集性可通过本斯试验来确证：将1g酵母湿菌体与10mL pH4.5的醋酸缓冲液混合，20℃平衡20分钟，加至带刻度的锥形离心管内，连续20分钟，每隔1分钟记录沉淀酵母的容量。实验后，检查pH是否保持稳定。
一般规定10分钟时的沉淀酵母量在1.0mL以上者为强凝集性，0.5mL以下者为弱凝集性。
5. 死灭温度检测
死灭温度可以作为酵母菌种鉴别的一个重要指标，一般说来，培养酵母的死灭温度在52~53℃之间，而野生酵母或变异酵母的死灭温度往往较高。
温度试验范围一般为48~56℃，温度间隔为1或2℃，在已灭菌的麦汁试管中（内装5mL 12%麦汁）接入培养24小时的发酵液0.1mL，放于恒温水浴内，每一样品做3个平行试验，并在另一同样的试管中放入温度计，待温度计达到所需温度时开始计时，保持10分钟后，置冷水中冷却，25℃培养5~7天，不能发酵的温度即为死灭温度。
6．子囊孢子的产生试验
子囊孢子的产生试验也是酵母菌种鉴别的一个重要指标。一般说来，培养酵母不能形成子囊孢子，而野生酵母较易形成子囊孢子。
将酵母菌体接种于醋酸钾培养基上，25℃培养48小时后，用显微镜检查子囊孢子产生情况。
7. 发酵性能测定
酵母的发酵度反映酵母对各种糖类的发酵情况，有些酵母不能发酵麦芽三糖，发酵度就低，有些酵母甚至能发酵麦芽四糖或异麦芽糖，发酵度就高。
将150mL麦汁盛放于250mL三角烧瓶中，灭菌，冷却后加入泥状酵母1g，置25℃温箱中发酵3~4天，每隔8小时摇动一次。发酵结束后，滤去酵母，蒸出乙醇，添加蒸馏水至原体积，测比重（见实验十）。
（1）外观发酵度＝（P - m）/P ×100％
式中 P——发酵前麦芽汁浓度
m——发酵液外观浓度（不排除乙醇）
（2）实际发酵度＝（P - n）/P ×100％， ·
n——发酵液的实际浓度（排除乙醇后）
一般外观发酵度应为66~80%，真正发酵度为55~70%
说明：啤酒酵母主要有两类：
(1)上面发酵啤酒酵母：进行上面发酵，发酵温度相对较高（15~20℃），发酵结束后，大部分酵母浮在液面。例如英国著名的淡色爱尔啤酒(A1e)，司陶特(Stout)黑啤酒等。
(2)下面发酵啤酒酵母：进行下面发酵，发酵温度在10℃左右，发酵结束后，大部分酵母沉于容器底部。例如捷克的比尔森(Pilsen)啤酒，德国的幕尼黑啤酒和多特蒙德啤酒，丹麦的嘉士伯啤酒等，我国的啤酒多属于此类型。

实验四 啤酒酵母的扩大培养

一、实验目的：学习酵母菌种的扩大培养方法，为实验室啤酒发酵准备菌种。
二、实验原理：在进行啤酒发酵之前，必须准备好足够量的发酵菌种。在啤酒发酵中，接种量一般应为麦芽汁量的10%（使发酵液中的酵母量达1×107个酵母/mL），因此，要进行大规模的发酵，首先必须进行酵母菌种的扩大培养。扩大培养的目的一方面是获得足量的酵母，另一方面是使酵母由最适生长温度（28℃）逐步适应为发酵温度（10℃）。
三、实验器材：恒温培养箱，生化培养箱，显微镜等。
四、实验步骤：本次实验拟用60升麦芽汁，因此应制备6000 mL含1×108个酵母/mL的菌种，以每班10个组计算，每个组应制备约600 mL菌种。建议流程如下：
28℃，2天
菌种扩大: 麦汁斜面菌种→麦汁平板——→镜检，挑单菌落3个，接种
50mL麦汁试管（或三角瓶）—20℃，2天→550mL麦汁三角瓶—15℃，2天→计数备用。
每天摇动3次 每天摇动3次
1 培养基的制备
取协定法制备的麦芽汁滤液（约400 mL），加水定容至约600 mL，取50 mL装入250 mL三角瓶中，另550 mL至1000 mL三角瓶中，包上瓶口布后，0.05 Mpa灭菌30分钟。
2 菌种扩大培养
按上面流程进行菌种的扩大培养（斜面活化菌种由教师提供）。注意无菌操作。
五、注意事项：灭菌后的培养基会有不少沉淀，这不影响酵母菌的繁殖。若要减少沉淀，可在灭菌前将培养基充分煮沸并过滤。
六、思考题：菌种扩大过程中为什么要慢慢扩大，培养温度为什么要逐级下降。

实验五 小型啤酒酿造设备介绍及发酵罐的空消

一、实验目的： 熟悉啤酒酿造工艺流程，对发酵罐进行空消，为发酵作好准备。
二、实验原理：啤酒酿造包括麦芽粉碎、麦汁糖化、麦醪过滤、麦汁煮沸、麦汁冷却及啤酒发酵等几个过程。啤酒发酵是纯种发酵，必须先对空的发酵罐进行灭菌处理。
三、实验器材：粉碎机、糖化煮沸锅、过滤沉淀槽、发酵罐、制冷机、板式换热器等
四、工艺流程简介：
啤酒发酵的工艺流程见图3-2-7
糖化煮沸锅，过滤槽、发酵罐的结构图见3-2-8
五、实验步骤：
1. 熟悉各项设备；
2. 清洗各项设备；
3. 在回旋沉淀槽、板式换热器、发酵罐中通入蒸汽，消毒30分钟。
4. 待各项设备使用结束后，应及时进行清洗灭菌。

实验六 麦芽汁的制备

一、实验目的： 熟悉麦芽汁的制备流程，为啤酒发酵准备原料。
二、实验原理：麦汁制备包括原料糖化、麦醪过滤和麦汁煮沸等几个过程。由于麦芽的价格相对较高，再加上发酵过程中需要较多的糖，因此目前大多数工厂都用大米做辅料。
三、实验器材：在糖化车间一般有四种设备：糊化锅、糖化锅、麦汁过滤槽和麦汁煮沸锅，本实验由于受条件限制，只能采用单式设备，即将糊化锅、糖化锅和麦汁煮沸锅合而为一。
四、实验步骤：
1. 糖化用水量的计算
糖化用水量一般按下式计算：
W=A（100—B）/B
式中B为过滤开始时的麦汁浓度（第一麦汁浓度）
A为100Kg原料中含有的可溶性物质（浸出物重量百分比）
W为100Kg原料（麦芽粉）所需的糖化用水量（升）。
例：我们要制备60升10度的麦芽汁，如果麦芽的浸出物为75%，请问需要加入多少麦芽粉？
因为W=75（100—10）/10=675升
即100Kg原料需675升水，则要制备60升麦芽汁，大约需要添加10Kg的麦芽和60升左右的水（不计麦芽溶出后增加的体积）。
2. 糖化
糖化是利用麦芽中所含的酶，将麦芽和辅助原料中的不溶性高分子物质，逐步分解为可溶性低分子物质的过程。制成的浸出物溶液就是麦芽汁。
传统的糖化方法主要有两大类，
（1）煮出糖化法：利用酶的生化作用及热的物理作用进行糖化的一种方法。
（2）浸出糖化法：纯粹利用酶的生化作用进行糖化的方法。
本实验采用浸出糖化法。推荐使用如下流程：
35~37℃，保温30分钟--→50~52℃ 60分钟--→65℃ 30分钟（至碘液反应基本完全）--→76~78℃ 送入过滤槽。
3. 麦汁过滤
将糖化醪中的浸出物与不溶性麦糟分开，以得到澄清麦汁的过程。由于过滤槽底部是筛板，要借助麦糟形成的过滤层来达到过滤的目的，因此前30分钟的滤出物应返回重滤。头号麦汁滤完后，应用适量热水洗糟，得到洗涤麦汁。
4. 麦汁煮沸
将过滤后的麦汁加热煮沸以稳定麦汁成分的过程。此过程中可加入酒花（一种含苦味和香味的蛇麻之花，每100升麦汁中添加约200克）。
煮沸的具体目的主要有：破坏酶的活性；使蛋白质沉淀；浓缩麦汁；浸出酒花成分；降低pH；蒸出恶味成分；杀死杂菌；形成一些还原物质。
添加酒花的目的主要有：赋予啤酒特有的香味和爽快的苦味；增加啤酒的防腐能力；提高啤酒的非生物稳定性。
将过滤的麦汁通蒸汽加热至沸腾，煮沸时间一般控制在1.5~2小时，蒸发量达15~20%（蒸发时尽量开口，煮沸结束时，为了防止空气中的杂菌进入，最好密闭）。
5. 回旋沉淀及麦汁预冷却：
将煮沸后的麦汁从切线方向泵入回旋沉淀槽，使麦汁沿槽壁回旋而下，借以增大蒸发表面积，使麦汁快速冷却，同时由于离心力的作用，使麦汁中的絮凝物快速沉淀的过程。
6. 麦汁冷却
将回旋沉淀后的预冷却麦汁通过薄板冷却器与冰水进行热交换，从而使麦汁冷却到发酵温度的过程。
7.设备清洗
由于麦芽汁营养丰富，各项设备及管阀件（包括糖化煮沸锅、过滤槽、回旋沉淀槽及板式换热器）使用完毕后，应及时用洗涤液和清水清洗，并蒸汽杀菌。

五、注意事项：
1. 若加热、煮沸过程中将蒸汽直接通入麦汁中，则由于蒸汽的冷凝。麦汁量会增加，因此最好用夹套加热的方法。
2. 麦汁煮沸后的各步操作应尽可能无菌，特别是各管道及薄板冷却器应先进行杀菌处理。
六、思考题：麦芽粉碎程度会对过滤产生怎样的影响？

实验七 糖度的测定

一、实验目的： 学习用糖锤度计测定糖度的方法。
二、实验原理：麦汁的好坏，将直接关系到啤酒的质量。工业上一般根据啤酒品种的不同来制造不同类型的麦芽汁，因此及时分析麦芽汁的质量，调整麦芽汁制造工艺显得尤为重要。麦汁的主要分析项目有：麦汁浓度、总还原糖含量、氨基氮含量、酸度、色度、苦味质含量等。一般分析项目应在麦汁冷却30分钟后取样。样品冷却后，以滤纸过滤，滤液放于灭菌的三角瓶中，低温保藏。全部分析应在24小时内完成。
为了调整啤酒酿制时的原麦汁浓度，控制发酵的进程，常常在麦汁过滤后、发酵过程中用简易的糖锤度计法测定麦汁的浓度。
现对糖锤度计这一简单的玻璃仪器作一介绍。
糖锤度计即糖度表，又称勃力克斯比重计。这种比重计是用纯蔗糖溶液的重量百分数来表示比值，它的刻度称为勃力克斯刻度（Brixsale,简写BX）即糖度，规定在20℃使用，BX与比重的关系举例如下（20℃）：
比 重 BX
1.00250 0.641
1.01745 4.439
1.03985 9.956
它们之间有公式可换算，同一溶液若测定温度小于20℃，则因溶液收缩，比重比20℃时要高。若液温高于20℃则情况相反。不在20℃液温时测得的数值可从附表中查得20℃时的糖度。我们说某溶液是多少Brix值，或多少糖度，应是指20℃的数值。若是在20℃以外用糖度表得数值，应加温度说明（显然，如测纯蔗糖溶液，只有在20℃液温测得的数值是真正表示了含蔗糖的重量百分数）。
Plato是一种与BX相同的表示比重的刻度，也以在20℃时纯蔗糖溶液的重量百分数表示。很明确，如3.9 plato就是指20℃时的数值，没有(例如)13℃时多少plato的含糊叫法，因为只有勃力克斯比重计，没有plato比重计，所以不存在各种温度用plato比重计去测定的情况，所以它纯粹是一种刻度，一种标准而已。
麦汁浓度常用BX表示，有时也用plato表示。换算举例：
在11℃液温用糖表读得啤酒主发酵液为4.2糖度，问20℃的糖度为多BX？多少 plato？查表：观测糖锤度温度校正表，11℃时的4.2糖度应减去0.34得3.86，即20℃时为3.86BX，亦即3.86plato。
巴林比重计：含义与勃力克斯比重计相同，但规定在17.5℃使用，而不是在20℃使用。
糖度表本身作为产品允许出厂误差为0.2BX，放在啤酒发酵液中指示时，由于CO2上升的冲力使表上升，而读数偏高，故刚从发酵容器取出的样品须过半分钟待CO2逸走后再读数，糖度表一直放在发酵液中作长期观测时，不读数时应设法使其全部没入发酵液中，否则浮在液面的泡盖物质会干结在表上，造成明显的读数偏差。
三、实验器材：糖锤度计
四、实验步骤：取100mL麦汁或除气啤酒，放于100mL量筒中，放入糖锤度计，待稳定后，从糖锤度计与麦汁液面的交界处读出糖度，同时测定麦汁温度，根据校准值，计算20℃时的麦汁糖度。若糖度较低，糖度计不能浮起来，可多加一些麦汁，直至糖度计浮在液体中。

表3-2-6 糖锤度与温度校正表（部分）
温度
1 Bx
2 Bx
3 Bx
4 Bx
5 Bx
6 Bx
7 Bx
8 Bx
9 Bx
10 Bx
11 Bx
12 Bx
15℃
0.20
0.20
0.2
0.21
0.22
0.22
0.23
0.23
0.24
0.24
0.24
0.25
16℃
0.17
0.17
0.18
0.18
0.18
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五、注意事项：糖锤度计易碎，使用时要格外小心
六、思考题：试比较勃力克斯与plato的异同。

实验八 啤酒主发酵

一、实验目的：学习啤酒主发酵的过程，掌握酵母发酵规律。
二、实验原理：啤酒主发酵是静止培养的典型代表。是将酵母接种至盛有麦芽汁的容器中，在一定温度下培养的过程。由于酵母菌是一种兼性厌氧微生物，先利用麦芽汁中的溶解氧进行好氧生长，然后利用EMP途径进行厌氧发酵生成酒精。显然，同样体积的液体培养基用粗而短的容器盛放比细而长的容器氧更容易进入液体，因而前者降糖较快（所以测试啤酒生产用酵母菌株的性能时，所用液体培养基至少要1.5米深，才接近生产实际）。定期摇动容器，既能增加溶氧，也能改善液体各成份的流动，最终加快菌体的生长过程。这种有酒精产生的静止培养比较容易进行，因为产生的酒精有抑制杂菌生长的能力，容许一定程度的粗放操作。由于培养基中糖的消耗，CO2与酒精的产生，比重不断下降，可用糖度表监视。若需分析其他指标，应从取样口取样测定。
三、实验器材：带冷却装置的发酵罐（50L，100L），若无发酵装置，可将玻璃缸放于生化培养箱中进行微型静止发酵。
四、实验步骤：
将糖化后冷却至10℃左右的麦芽汁送入发酵罐，接入酵母菌种（实验四，共约5升），然后充氧，以利酵母菌生长，同时使酵母在麦汁中分散均匀（充氧，即通入无菌空气，也可在麦汁冷却后进行，一般温度越低，氧在麦汁中的溶解度越大），待麦汁中的溶解氧饱和后，让酵母进入繁殖期，约20小时后，溶解氧被消耗，逐渐进入主发酵。
由于发酵罐密闭，很难看清发酵的整个过程，建议一个组在1000 mL玻璃缸中进行啤酒主发酵小型试验。具体方法如下：
1、 洗标本缸，缸口用8层纱布包扎后，进行高压灭菌；
2、 将协定法糖化得到的麦汁，加水至600 mL，再加葡萄糖使糖度达到10 Bx，灭菌，冷却后摇动充氧，沉淀，将上清液以无菌操作方式到入已灭菌的标本缸中。
3、 将50mL酵母菌种接入，在10℃生化培养箱中发酵，每天观察发酵情况。
4、 主发酵： 10℃，7天→至4.0 plato时结束（嫩啤酒）。一般主发酵整个过程分为酵母繁殖期，起泡期、高泡期、落泡期和泡盖形成期等五个时期。仔细观察各时期的区别。

主发酵测定项目 接种后取样作第一次测定，以后每过12或24h测1次直至结束。全部数据叠画在1张方格纸上，纵坐标为7个指标，横坐标为时间。共测定下列几个项目：
a、糖度（用糖度表测，并换算成plato）；
b、细胞浓度、出芽率、染色率；
c、酸度
d、α-氨基氮
e、还原糖
f、酒精度
g、pH
h、色度
I、浸出物浓度
J、双乙酰含量
6、作业要求
⑴. 画出发酵周期中上述10个指标的曲线图，并解释它们的变化。
⑵. 记下操作体会与注意点
附：发酵液的取样方法
若在发酵罐中发酵，可从取样开关处直接取样（先弃去少量发酵液）。
若无取样开关，可用一灭过菌的乳胶管，深入发酵池面下20cm处，用虹吸法使发酵液流出，，弃去少量先流出的发酵液，然后用一清洁干燥的三角瓶接取发酵液作样品。
五、注意事项：除少数特殊的测定项目外，应将发酵液在两干净的大烧杯中来回倾到50次以上，以除去CO2，再经过滤后，滤液用于分析。分析工作应尽快完成。

实验九 总还原糖含量的测定（斐林试剂法）

一、实验目的：学习用斐林试剂测还原糖的方法，
二、实验原理：斐林试剂由甲、乙液组成，甲液为硫酸铜溶液，乙液为氢氧化钠与酒石酸钾钠溶液。平时甲、乙溶液分开贮存，测定时才等体积混合，混合后，硫酸铜与氢氧化钠反应，生成氢氧化铜沉淀： 2Na0H十CuS04 ——→Cu（OH）2↓十Na2SO4
氢氧化铜因能与酒石酸钾钠反应形成络合物而使沉淀溶解。酒石酸钾钠铜络合物中的二价铜是一个氧化剂，在氧化醛糖和酮糖（合称总还原糖）的同时，自身被还原成一价的红色氧化亚铜沉淀：反应终点用美蓝（亚甲基蓝）来指示。由于美蓝的氧化能力较二价铜弱，故待二价铜全部被还原糖还原后，过量一滴还原糖立即使美蓝还原成无色的美白。
三、实验器材与试剂： 电炉，滴定管等
(1)斐林溶液
甲液：称取3.4939g结晶硫酸铜(CuS04·5H20)，溶于50mL水中，如有不溶物须过滤。
乙液：称取13.7g酒石酸钾钠，5g NaOH，溶于50mL水中，若有沉淀过滤即可。
(2)0.2％标准葡萄糖液： 精确称取于105℃烘至恒重的分析纯葡萄糖0.5000g，用水溶解后，加2.5mL浓盐酸，定容成至250mL。
(3) 1％美蓝指示剂： 0.5g美蓝溶于50mL蒸馏水中。
四、实验步骤
1.斐林溶液的标定
由于试剂的纯度不同，配制时称量、定容等有误差，各人所配的斐林试剂氧化能力会有差异，因此有必要对斐林溶液进行校准。配制准确时，斐林甲、乙液各5mL可氧化25mL 0.2％标准葡萄糖溶液。
①预滴定：准确吸取斐林甲、乙液各5mL，放入250mL锥形瓶中，加水约20mL，并从滴定管加入约24mL 0.2％标准葡萄糖溶液（如果斐林甲、乙液配制非常精确，从理论上说，应消耗25mL 0.2％标准葡萄糖溶液，故先加24mL），将锥形瓶置电炉上加热煮沸，维持沸腾2分钟，加入1％美蓝指示剂2滴，在沸腾状态下，以每两秒1滴的速度滴入0.2％标准葡萄糖溶液，至溶液刚由蓝色变为鲜红色为止。后滴定操作应在1分钟内完成，整个煮沸时间应控制在3分钟之内。记下总耗糖量V。
②正式滴定：与预滴定基本相同，只是用（V-1）mL标准葡萄糖代替24mL葡萄糖液，最后在1分钟内滴定完成。
2.试样的滴定
①稀释：将样品除气后，进行适当稀释，以期用15~50mL（最好20~30mL）稀释液使滴定完成。一般麦汁稀释50倍左右，啤酒主酵液稀释20倍左右。
②滴定：基本同上，也分预滴定和正式滴定。只不过用样品稀释液代替标准葡萄糖液，由于预滴定时不知道需要多少毫升稀释液，因此误差较大。正式滴定时先加入比预滴定少1mL的稀释液。正式滴定至少进行2次。
计算总还原糖量，以100 mL样品中含有的葡萄糖克数来表示
五、注意事项：
(1) 指示剂美蓝本身具有弱氧化性，要消耗还原糖．所以每次用量应保持一致。
(2) 次甲基蓝被还原为无色后，易被空气氧化又显蓝色，所以滴定过程应保持沸腾状态，使瓶内不断冒出水蒸汽，以防空气进入。
(3) 反应过程中不能摇动锥形瓶，沸腾已可使溶液混匀。
(4) 测定时须严格控制反应液体积，以保持一致的酸碱度。因此要控制电炉火力及滴定速度。
六、思考题：为什么要进行预滴定？

实验十 α–氨基氮含量的测定

一、实验目的：学习α–氨基氮含量的测定方法，控制麦汁或啤酒质量。
二、实验原理：α–氨基氮为α–氨基酸分子上的氨基氮。水合茚三酮是一种氧化剂，可使氨基酸脱羧氧化，而本身被还原成还原型水合茚三酮。还原型水合茚三酮再与末还原的水合茚三酮及氨反应，生成蓝紫色缩合物，颜色深浅与游离α–氨基氮含量成正比，可在570nm下比色测定。
三、实验器材与试剂：分光光度计，电炉等
(1)显色剂 称取10g Na2HPO4·12H2O ，6g KH2PO4 ，0.5g水合茚三酮，0.3g果糖，用水溶解并定容至100mL（pH 6.6~6.8），棕色瓶低温保存，可用两周。
(2)碘酸钾稀释液 溶0.2g碘酸钾于60mL水中，加40mL 95％乙醇。
(3)标准甘氨酸贮备溶液 准确称