凡纳滨对虾类胰岛素肽基因的结构及表达分析.pdf
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1、第 45 卷 第 1 期 渔 业 科 学 进 展 Vol.45,No.1 2 0 2 4 年2 月 PROGRESS IN FISHERY SCIENCES Feb.,2024 *国家自然科学基金(31972782;32273102)、国家重点研发计划(2018YFD0900103;2018YFD0900404)、中国科学院先导专项(XDA24030105)和财政部和农业农村部:现代农业产业技术体系(CARS-48)共同资助。苏曼文,E-mail: 通信作者:张晓军,研究员,E-mail: 收稿日期:2022-09-01,收修改稿日期:2022-09-28 DOI:10.19663/j.iss
2、n2095-9869.20220901003 http:/ SU M W,ZHANG X J,YUAN J B,ZHANG X X,YANG M,LI F H.Gene structure and expression analysis of insulin-like peptide in the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei.Progress in Fishery Sciences,2024,45(1):105117 凡纳滨对虾类胰岛素肽基因的结构及表达分析*苏曼文1,2,3 张晓军1,2,3 袁剑波1,2 张小溪1,2 杨 铭4 李富花
3、1,2,3(1.中国科学院海洋研究所 中国科学院实验海洋生物学重点实验室 山东 青岛 266071;2.海洋生物学与生物技术功能实验室 山东 青岛 266237;3.中国科学院大学 北京 100049;4.福州市海洋与渔业技术中心 福建 福州 350005)摘要 类胰岛素肽(ILP)是胰岛素超家族的成员,具有进化保守性,是影响动物生命活动的重要因子之一。本研究克隆了凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)ILP1(LvILP1)全长基因,mRNA 长度为812 bp,其中开放阅读框长 543 bp,编码 180 个氨基酸。序列分析显示,LvILP1 蛋白预计分子量为20.81 k
4、Da,理论等电点为 9.45,不稳定系数为 96.20,具有一个信号肽,没有跨膜结构,推导其为碱性、不稳定的分泌蛋白。结构预测显示,该蛋白具有胰岛素超家族保守的 IlGF 结构域,由 N 端信号肽、B 链、C 肽和 A 链组成,同时具有 6 个保守的半胱氨酸位点和 2 个断裂位点。系统进化分析显示,LvILP1 与斑节对虾(Penaeus monodon)ILP7 亲缘关系最近,与甲壳动物 ILP1 聚为一支,然后分别与无脊椎动物 ILP7、脊椎动物松弛素(Relaxin)、胰岛素(Insulin)、胰岛素样生长因子(IGF)聚在一起。无脊椎动物 ILP7 类与外群海葵(Actinia ten
5、ebrosa)ILP 的进化关系最近,表明这类 ILP可能与胰岛素超家族的祖先较为相似。转录因子预测显示,LvILP1 可能的转录因子为叉头框蛋白O3(FoxO3)、糖皮质激素受体(GR)、CAAT 区/增强子结合蛋白(C/EBP)、信号传导及转录激活蛋白(STAT)等;蛋白互作分析显示,LvILP1 与细胞膜上的胰岛素受体(IR)、神经信号分子(VGLUT1、SYT 1_3)、糖蛋白激素(GPHB5)、鞣化激素(Bursicon)等相互作用;对这些转录因子和互作蛋白的生物功能进行分析,进而推测 LvILP1 可能具有调节生长发育、激素刺激反应、神经系统稳态、碳水化合物稳态、蜕皮后组织重建以及
6、生殖发育等作用。分析发现,LvILP1 在凡纳滨对虾早期发育阶段有较高表达,在成体各个组织中均有表达,但在眼柄中表达量最高。本研究结果为深入了解凡纳滨对虾 ILP 的基因结构、进化、功能及表达提供了重要信息,同时为凡纳滨对虾的分子育种和健康养殖提供线索。关键词 凡纳滨对虾;类胰岛素肽;基因结构;功能预测;表达分析 中图分类号 Q173 文献标识码 A 文章编号 2095-9869(2024)01-0105-13 在脊椎动物中,胰岛素超家族由胰岛素(insulin)、胰岛素样生长因子(insulin-like growth factor,IGF)、松弛素(relaxin)等成员组成,它们在结构上
7、高度保守,均具有 N 端信号肽、B 链、C 肽和 A 链;在功能上,106 渔 业 科 学 进 展 第 45 卷 这些分子通过与细胞膜上的受体结合激活胰岛素信号通路,从而调节生物新陈代谢、生长发育、繁殖与寿命等关键生理过程(Hoffmann et al,2011)。目前,在无脊椎动物中未发现胰岛素或 IGF,但在果蝇(Drosophila melanogaster)(Riehle et al,2006)、埃及伊蚊(Aedes aegypti)(Liu et al,2016)、东澳岩龙虾(Sagmariasus verreauxi)(Chandler et al,2017)、秀丽隐杆线虫(Cae
8、norhabditis elegans)(Zheng et al,2018)、紫球海胆(Strongylocentrotus purpuratus)(Perillo et al,2014)、澳大利亚斑点海葵(Oulactis sp.)(Mitchell et al,2021)等物种中发现了多种胰岛素的类似物类胰岛素肽(insulin-like peptides,ILPs),这些 ILP 都具有胰岛素超家族保守的结构特征与功能,表明 ILP 是一个古老的胰岛素超家族成员。昆虫 ILP 主要由大脑的神经分泌细胞产生,功能上比脊椎动物胰岛素更加广泛和复杂,在调控代谢、生长、变态、繁殖、免疫、蜕皮和昼
9、夜节律等方面发挥重要作用(Wu et al,2006)。例如,在长红锥蝽(Rhodnius prolixus)和柞蚕(Antheraea pernyi)中,ILP基因的表达能够调节碳水化合物代谢和海藻糖代谢(Li et al,2021;Haddad et al,2022);在果蝇中过表达DILP1 可以促进蛹期器官组织的生长(Liao et al,2020);在马铃薯甲虫(Leptinotarsa decemlineata)中干扰 LdILP 表达会导致成蛹时间延长(Fu et al,2016);在 柑 桔 木 虱(Diaphorina citri)中 干 扰 DcILP1 和DcILP2 表
10、达会导致产卵数量显著减少,且卵巢空泡化使其发育受到极大的抑制(Wang et al,2022);在蓖麻蚕(Samia cynthia ricini)中 ScILP 能够刺激促前胸腺激素(Prothoracicotropic hormone,PTTH)的活性,从而进一步调控蜕皮激素(20-hydroxyecdysone,20E)的合成与释放(Nagata et al,1999);而在果蝇中敲除 DILP5会严重影响昼夜节律的周期(Yamaguchi et al,2022)。甲壳动物中 ILP 基因的相关研究较少。已有的研究结果显示,ILP 主要在脑、眼柄、性腺和触角腺等组织中表达(Chandle
11、r et al,2017;Jiang et al,2020)。在功能方面,ILP 参与调控代谢、生长、免疫和生物与环境相互作用等生命活动。例如,在凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)和 中 华 绒 螯 蟹(Eriocheir sinensisis)中过表达 LvILP1 能够降低血淋巴中葡萄糖的含量(Su et al,2022;Wang et al,2020);罗氏沼虾(Macrobrachium rosenbergii)中干扰 ILP 表达能够降低肝胰腺中海藻糖和糖原水平(Jiang et al,2020);在日本沼虾(Macrobrachium nipponense)中干
12、扰 ILP 表达显著减缓了其生长速度(Li et al,2019);中华绒螯蟹中 EsILP 在眼柄和血细胞中高表达以参与机体对嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)感染的免疫反应(Wang et al,2020);而 在 飞 马 哲 水 蚤(Calanus finmarchicus)中鉴定出 4 种 CfILP 前体,研究发现,其可能参与控制生物体与环境的相互作用,例如季节性亚成体滞育的调节(Christie et al,2016)。凡纳滨对虾因具有生长快、出肉率高、抗病性强、耐粗饲料等诸多优点,已成为我国和世界上最具经济价值的水产养殖虾类。作为重要的水产经济物种,其生长性
13、状的遗传学基础一直倍受关注(方振朋等,2020;刘峻宇等,2021)。在最近的研究中,本课题组鉴定了凡纳滨对虾胰岛素信号通路中的一些重要基因,如胰岛素受体(insulin receptors,InRs)、胰岛素样生长因子结合蛋白(insulin-like growth factor binding proteins,IGFBPs),以及通路下游的磷脂酰肌醇-3-激酶(phosphoinositide-3-kinase,PI3K)、叉头框蛋白 O(forkhead box O,FoxO)、糖原合成酶激酶-3(glycogen synthase kinase-3,GSK3)等基因,初步的功能研究显
14、示,干扰这些基因的表达会影响对虾的生长速度(Pang et al,2021a、b),由此确认对虾中存在胰岛素信号通路,该通路可以调控虾类的生长。而作为激活该信号通路的开关分子 ILP,其基因结构、系统进化以及分子功能尚不清楚。本研究从凡纳滨对虾转录组数据中鉴定出一条 ILP 基因,通过生物信息学分析方法预测其结构、系统进化、转录因子、互作蛋白等,并通过实时荧光定量 PCR(RT-qPCR)检测该基因在各组织中的相对表达量,这些研究结果可为后续对虾ILP 的结构与功能研究及筛选胰岛素信号通路基因作为分子遗传育种的靶点提供基础。1 材料与方法 1.1 实验材料 本实验所用的凡纳滨对虾来自山东日照养
15、殖基地,在中国科学院海洋研究所(山东青岛)的水族楼中养殖至少 1 周以稳定其生存状态。养殖海水清洁无菌,氧气充足,温度为(25.00.2),盐度为 30,pH值为 7.50.1。每日 09:00、15:00 和 21:00 分别使用颗粒饲料(烟台大乐饲料公司)喂食一次,每日更换一次养殖海水。1.2 组织采集 选取 9 尾健康雌性对虾,体长为(6.70.8)cm,体重为(4.50.7)g。取样组织为眼柄、卵巢、表皮、肌肉、胃、脑、肠、鳃、肝胰腺、腹神经、血细胞、胸神经节、淋巴器官和心脏,共计 14 种组织。将每第 1 期 苏曼文等:凡纳滨对虾类胰岛素肽基因的结构及表达分析 107 3 尾虾的相同
16、组织混为 1 个样品(确保样品量足够后续分析),共取 3 个生物学重复。取样完成后,将样品迅速放入液氮中冷冻,最后将所有样品放置80 超低温冰箱储存。1.3 实验方法 1.3.1 LvILP1 基因序列鉴定 从本实验室前期获得的凡纳滨对虾基因组和转录组数据中筛选并提取所有注释为 ILP 基因的序列。所获得的序列作为query,在 NCBI Blast 网站(https:/blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)上进行比对,筛选出与其他物种 ILP 基因相似度较高的序列。将这些序列提交至 ExPASy translatetool 网站(http:/web.expasy.
17、org/translate/),得到翻译后的氨基酸序列。所有的氨基酸序列提交至SMART 网站(http:/smart.embl-heidelberg.de/),预测其是否具有典型的功能结构域。最后,对这些序列的结构域进行筛选,最终鉴定出一条 ILP 基因序列,并命名为 LvILP1。将 LvILP1 基因的 cDNA 序列在对虾基因组网站(http:/ BLASTN 比对,获得该基因在基因组上的位置信息。根据比对结果,当某段序列和基因组的比对率在 97%以上时被认定为精确匹配,从而得到基因的结构信息。1.3.2 总 RNA 的提取及 cDNA 第一链的合成 将收集的样品进行预处理,体积较大的
18、组织(如肌肉、肝胰腺),采用液氮研磨法处理,其他体积较小的组织低温匀浆处理。将处理好的对虾组织样品使用RNAiso Plus 试剂(TaKaRa,日本)提取总 RNA,通过Nanodrop 2000 分光光度计(Thermo Fisher Scientific,美国)和 1.5%(w/v)琼脂糖凝胶电泳分别检测 RNA 的浓度和质量,最后使用反转录试剂盒 PrimeScript RT reagent kit(TaKaRa,日本)将 RNA 反转录为 cDNA。1.3.3 LvILP1 基因克隆 将 LvILP1 基因序列提交至 Primer 3 Plux 网站(https:/ 1)。以脑组织的
19、 cDNA 作为模板,使用 PCR 仪进行扩增。PCR 程序:95 预变性 2 min;95 变性 20 s,60 退火 40 s,72 延伸 20 s,40 个循环;72 延长 10 min。获得的 PCR产物经 1.5%(w/v)琼脂糖凝胶电泳检测,验证条带大小一致后,使用 MiniBEST DNA fragment purification试剂盒(TaKaRa,日本)进行纯化。纯化后的 DNA 连接到 pMD19-T vector(TaKaRa,日本)中,连接体系:pMD19-T vector 0.5 L,Solution 5.0 L 及 DNA纯化产物 4.5 L,置于 16 水浴锅中
20、连接 12 h。之后转入 E.coli Trans DH5 感受态细胞(TaKaRa,日本)中过夜培养,筛选阳性单克隆并进行菌落 PCR 鉴定,将含有目的基因的菌液进行测序(上海生工)。1.3.4 LvILP1 基因序列分析 通过在线网站工具推断 LvILP1 基因的核苷酸序列与氨基酸序列所包含的 生 物 学 信 息,采 用 ExPASy 中 的 ProtParam(https:/web.expasy.org/protparam/)预测蛋白质的相对分子质量、等电点、不稳定系数和平均疏水率(Wilkins et al,1999);SignalIP-5.0(https:/services.heal
21、thtech.dtu.dk/service.php?SignalP-5.0)预测信号肽;TMHMM Server 2.0(https:/services.healthtech.dtu.dk/service.php?TMHMM-2.0)预测蛋白质有无跨膜结构域;PSORT Prediction(https:/psort.hgc.jp/form2.html)预测蛋白质亚细胞定位;SMART 预测蛋白质结构域;SOPMA(https:/npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)预 测 蛋 白 质 二 级 结 构;Q
22、UARK(https:/zhanggroup.org/QUARK/)预测蛋白质三级结构,预测结果用 SAVES v6.0(https:/saves.mbi.ucla.edu/)进行质量评估;Neuropred(http:/stagbeetle.animal.uiuc.edu/cgi-bin/neuropred.py)预测形成成熟多肽的断裂位点;MethPrimer(http:/www.urogene.org/cgi-bin/methprimer/methprimer.cgi)预 测CpG 岛;AnimalsTFDB 3.0(http:/ PROMO(http:/alggen.lsi.upc.e
23、s/cgi-bin/promo_v3/promo/promo.cgi?dirDB=TF_8.3&calledBy=alggen)预测转录因子(Messeguer et al,2002);STRING(https:/cn.string-db.org/)预 测 互 作 蛋 白;Jalview软件比对 LvILP1 与其他物种及胰岛素超家族基因在序列上的保守性;SMART 预测获得 LvILP1及胰岛素超家族成员的结构域区段序列,使用MEGA-X 软件中的邻接法(Neighbor-Joining)对这些序列进行系统进化分析,同时使用 MEME 网站(https:/meme-suite.org/mem
24、e/)预测序列保守的 motif。1.3.5 LvILP1 基因在发育时期的表达特征 凡纳滨对虾早期发育过程大体可分为胚胎期、无节幼体期、溞状幼体期、糠虾幼体期和仔虾期 5 个阶段。本实验室前期收集了凡纳滨对虾早期发育各阶段多个时期的混合样品作为检测样品,完成了早期发育 5 个阶段的转录组测序(Wei et al,2014),并获得每个转录本的相对表达量 FPKM(Fragments Per Kilobase of exon model per Million mapped fragments)值。本研究从中提取 LvILP1 基因在每个发育时期的 FPKM 值,并导入 GraphPad Pr
25、ism 7.0 软件绘图。1.3.6 LvILP1 基因组织表达的实时定量分析 在Primer 3 Plux 网站上设计荧光定量的引物(表 1),设置检测片段长度为 200 bp 左右。将组织样品的 cDNA 稀释至适当浓度,使用 Eppendorf Mastercycler ep realplex 108 渔 业 科 学 进 展 第 45 卷 表 1 本研究所用引物 Tab.1 The primers used in this study 引物 Primer 引物序列 Primer sequence(53)用途 Purpose LvILP1-F CCGAAAAGATGGTGATGTCGATG
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