枳壳溃疡病致病菌的分离与鉴定_秦倩.pdf
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1、江西农业学报 2023,35(01):109115ActaAgriculturaeJiangxiDOI:10.19386/ki.jxnyxb.2023.01.018枳壳溃疡病致病菌的分离与鉴定秦 倩,董燕婧,刘红宁,田 磊,张寿文*(江西中医药大学 中药资源与民族药研究中心,江西 南昌 330004)摘 要:以不同种植基地的枳壳溃疡病叶片为供试材料,采用平板划线法对病原菌进行分离,按照柯赫氏鉴定法则对分离的病菌进行致病性鉴定,通过形态学和16S rDNA序列分析,鉴定枳壳溃疡病致病菌的种类。结果表明:从溃疡病症状的枳壳叶片中共分离得到31株细菌,其中XG7、XGZ1、XGZ2、XGZ3、XGZ
2、8、SH9、SH10、YC1、ZS1等9株为枳壳溃疡病致病菌,菌株类型鉴定为地毯草黄单胞杆菌柑橘致病变种(Xanthomonas citri pv.citri),为枳壳溃疡病病原菌的首次报道。研究结果可为研究枳壳溃疡病的发生规律和精准防治提供科学依据。关键词:枳壳;溃疡病;病原菌;分离;鉴定 中图分类号:S435.671 文献标志码:A 文章编号:1001-8581(2023)01-0109-07 Isolation and Identification of Fructus aurantii Canker Pathogens QINQian,DONGYan-jing,LIUHong-ning
3、,TIANLei,ZHANGShou-wen*(JiangxiUniversityofChineseMedicine,ResearchCenterforTraditionalChineseMedicineResourcesandEthnicMedicine,Nanchang330004,China)Abstract:Inthisexperiment,theleaveswithFructus aurantiicankerwhichwerecollectedfromdifferentplantingbaseswereusedasmaterials,andthepathogenicbacteriaw
4、asseparatedbystreakplatemethod.ThepathogenicityoftheseparatedbacteriawasidentifiedaccordingtoKoch sidentificationrule.ThepathogenicbacteriatypesofFructus aurantiicankerwereidentifiedbymorphologicalobservationand16SrDNAsequenceanalysis,and31bacterialstrainswereseparatedfromFructus aurantiileaveswithc
5、ankersymptoms,ofwhich9strainsXG7,XGZ1,XGZ2,XGZ3,XGZ8,SH9,SH10,YC1andZS1werethemainpathogensofFructus aurantiicanker,and9strainswereidentifiedasXanthomonas citripv.citri,whichwasreportedforthefirsttimeinFructus aurantiicanker.ThestudycanprovidescientificbasisforoccurrenceandprecisecontrolofFructus au
6、rantiicanker.Key words:Fructus aurantii;Canker;Pathogen;Isolation;Identification枳壳为芸香科柑橘属植物酸橙(Citrus aura-ntium L.)及其栽培变种的干燥未成熟果实1,为江西“赣十味”药材之一。随着枳壳种植规模的不断扩大,枳壳溃疡病的发生也日益严重,该病具有传播速度快、防治较困难的特点,严重影响了枳壳药材的品质和产量2-3。柑橘溃疡病是由黄单胞杆菌属黄单胞菌柑橘致病变种(Xanthomonas citripv.citri)引起的致病力强、蔓延广泛的细菌性病害,是一种在柑橘类植物上重点检疫的病害4-8。
7、目前已发现的柑橘溃疡病的致病菌包含A、B、C、D、E等5个菌系,其中致病力最强的A菌系主要分布于亚洲,柑橘属的多个品种都能被其侵染,其中我国南方柑橘产区的病株基本属于毒力较强的A型菌系6,9-10。国内外有关柑橘溃疡病致病菌的分离、鉴定报道较多。从不同产地、不同品种的柑橘属植物中分离出溃疡病致病菌11-16,通过形态、生理生化特性、致病性等方面的系统研究,发现大部分病害均是由柑橘溃疡病(Xcc)引起17-21。目前,针对枳壳溃疡病的分离、鉴定暂无系统性的研究。本研究以不同种植基地的枳壳溃疡病叶片为供试材料,采用平板划线法对病原菌进行分离,根据柯赫氏鉴定法则收稿日期:2022-06-01基金项目
8、:国家重点研发计划(2017YFC1700903);江西省现代农业产业技术体系建设专项(JXARS-11)。作者简介:秦倩(1995),女,甘肃天水人,博士研究生,研究方向为中药资源开发与利用。*通信作者:张寿文。江 西 农 业 学 报35 卷110对分离的病菌进行致病性鉴定,通过形态学和16SrDNA序列分析,探明江西地区枳壳溃疡病的致病菌类型,以期为枳壳溃疡病的综合防治研究提供理论依据。1 材料与方法1.1 试验材料、试剂与仪器于2020年67月在江西新干、峡江、鄱阳、宜春、樟树等7个不同的种植基地采集具有典型溃疡病症状的枳壳叶片,共收集到39份溃疡病叶片(表1);在新干枳壳种植基地采集健
9、康的枳壳植株,将其移栽于江西中医药大学实验室备用。表1 枳壳溃疡病病菌样品表样品编号采集地点地理位置采集日期PY1PY4鄱阳县元宝山种植公司116.70487E,29.49568N2020/06/01XG1XG9新干县商州枳壳种植基地115.47262E,27.71126N2020/06/050XGZ1XGZ10新干县厚城枳壳种植基地/2020/06/05SH1SH10新干县三湖乡枳壳基地115.41936E,27.94387N2020/06/06XJ1、XJ2峡江玉峡药业115.29902E,27.55482N2020/06/06YC1、YC2宜春茂悦农业枳壳基地/2020/07/28ZS1
10、、ZS2樟树枳壳基地/2020/07/28本试验使用的培养基NA:胰蛋白胨5g/L、牛肉提取物3g/L、琼脂15g/L;培养基LB:胰蛋白胨10g/L、酵母浸膏5g/L、氯化钠5g/L。主要使用的试剂和仪器包括:TaqPlusDNA聚合酶、PCR扩增引物(购自生工生物公司);6DNALoadingDye(购自ThermoFisher公司);Verity96-WellPCR仪(购自美国ABI公司);FR-980A凝胶成像仪(购自上海复日科技有限公司);测序仪,SMA4000UV-VisSpectropHotometer(购自Merinton公司)。1.2 研究方法1.2.1 枳壳溃疡病田间危害症
11、状调查 通过调查枳壳溃疡病的田间发病程度,记录病害叶片的采集时间、地点和病叶症状,同时对具有典型溃疡病的枳壳叶片进行拍照,密封保湿条件下带回实验室保存备用22。1.2.2 病原菌的分离纯化 采用平板划线法对病原菌进行分离23。使用清水冲洗具有典型溃疡病症状的枳壳叶片,置于超净工作台,在病健交界处取下小块病组织,用75%乙醇表面消毒30s,置于0.1%HgCl溶液中消毒35min,然后使用无菌水冲洗3次,以冲洗第三次的无菌水平板划线为对照,每组重复3次。在完全消毒的病斑组织中添加适量无菌水并研碎,取浸出液在NA平板培养基上划线,在28条件下培养形成单个菌落24。选择典型的单个菌落,接于NA培养基
12、上纯化。剩余研磨液转移至LB培养基中,在28条件下富集培养48h,平板划线分离,继续培养24d。挑取单菌落纯化23次后,保存备用。已纯化的菌株置于1.0mLLB液体培养基的菌种保存管中,在28、180r/min下震荡培养24h后,取相同体积的30%无菌甘油加入保存管中,标记编号和时间,置于-80冰箱中保存。1.2.3 病原菌的致病性检测 将分离得到的病菌按照柯赫氏法则进行回接验证,分离得到的病原细菌接种到健康枳壳叶片上,在适宜的温度和湿度下培养一段时间后,观察其叶片是否产生与田间相似的病害症状22。1.2.3.1 菌悬液的制备 将分离纯化得到的菌株在NA平板培养基上划线,于28恒温箱中培养24
13、48h,挑取单株菌落到LB液体培养基中,在28、150r/min条件下振荡培养1624h,使用无菌水稀释菌液浓度至1108CFU/mL,置于4冰箱内保存备用。1.2.3.2 离体叶片针刺接种 接种用的枳壳叶片均采自江西中医药大学的实验室盆栽。基于李云峰等25的离体接种方法进行改进,然后开展试验。根据叶片面积大小用注射器在主脉两侧各针刺35个为1组的针刺孔,每个叶片至少设置2组平行针刺孔,试验组每孔接种100 L菌悬液,然后将叶片置于3层无菌滤纸保湿的培养皿内,以无菌水作为阴性对照,均置于28恒温箱内培养。接种后每天检查叶片的发病情况,记录发病率与开始显症时间26。试验过程中及时补充培养皿中的水
14、分,以保证培养皿内部的湿度。1.2.3.3 接种病原菌的再分离 对接种离体叶片具1 期111秦倩等:枳壳溃疡病致病菌的分离与鉴定有致病性的菌株,在NA培养基上进行再分离,将得到的分离物和原始接种菌株进行菌落形态特征的比较,并初步判断回接分离到的菌株和原始菌株是否属于同一种病原菌,完成柯赫氏法则23。1.2.4 病原菌的形态学观察1.2.4.1 病原菌的菌落形态观察 将纯化的病原菌在NA培养基上活化,培养2448h后观察菌落的形态特征,包括菌落的形状、大小、颜色、光泽以及菌落表面是否隆起或凹陷、菌落边缘的形状、透明度和粘度、培养基颜色的变化等22。1.2.4.2 病原菌的革兰氏染色 参照方中达2
15、3细菌革兰氏染色方法对病原菌进行染色并观察。1.2.5 病原菌分子生物学鉴定 将病原菌接种至NA培养基上,待长出单个菌落后,使用试剂盒提取病原菌基因组的DNA,利用细菌通用引物27F(AGTTTGATCMTGGCTCAG)/1492R(GGTTACCTTGTTACGACTT)对病原菌16SrDNA区进行PCR扩增27。PCR反应体系(50 L):模板DNA(2050ng/L)12 L,27F/1492R引物(10 mol)各2L,dNTP(mix)2 L,TaqBuffer5 L,Taq酶0.5L,加ddH2O至50L。PCR反应条件:95 下处理35min;94下处理30s,5560下处理2
16、530s,72下处理3050s,35个循环;最后72处理58min。待PCR反应完成后,用1琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物,于凝胶成像仪下观察目的条带。测序工作委托生工生物工程(上海)股份有限公司完成。将测序结果与GenBank中的已知序列进行Blast比对,并提交GenBank获得登录号28。2 结果与分析2.1 枳壳溃疡病田间病害症状2020年67月上旬在江西新干、三湖、峡江、樟树、宜春等枳壳种植地对发病严重的枳壳溃疡病进行田间观察,发现溃疡病主要侵染枳壳的叶片和果实。从图1中可以看出,枳壳溃疡病的危害症状主要表现为:发病初期,叶片出现黄色针头大小的油渍状半斑点,随着时间的变化向周围扩散并凸
17、起,成为近圆形、淡黄褐色病斑;发病中期,病斑处表皮破裂,隆起更严重,逐渐木栓化,表面粗糙,周围有黄色晕圈出现;发病后期,病斑中央呈火山状裂口凹陷,病斑联合形成不规则的大病斑。abca:发病初期;b:发病中期;c:发病晚期。图1 枳壳溃疡病田间病害症状2.2 枳壳溃疡病的分离与纯化通过对患有枳壳溃疡病的叶片进行分离(图2)及纯化(图3),共获得31株菌株,所有菌株在NA培养基上第1天生长较少,第2天开始大量生长,形成明显菌落。其中8株来自江西新干县商洲枳壳基地,6株来自新干县厚城枳壳基地,2株来峡江枳壳基地,7株来自三湖枳壳基地,4株来自鄱阳,2株来自樟树,2株来自宜春茂悦农业枳壳基地。有菌株在
18、NA培养基上第1天生长较少,第2天开始大量生长,形成明显的菌落。2.3 枳壳溃疡病致病性检测叶片通过刺伤接种进行致病性检测,菌株XG7、XGZ1、XGZ2、XGZ3、XGZ8、SH9、SH10、YC1、ZS1接种7d后,接种部位均出现了明显溃疡病症状,在叶片表皮组织可以观察到黄色病斑(图4a);随着接种时间的延长,14d后接种部位病斑面积逐渐扩大并蔓延,病斑中间逐渐木栓化(图4b);接种21d后叶片变枯,接种部位病斑从黄色江 西 农 业 学 报35 卷112变成褐色,病斑突起明显(图4c);其余菌株与对照组并未表现出明显症状(图4d图4f)。从发病枳壳叶片上均能再分离出与初接菌株相同的分离物(
19、图5),确定为枳壳溃疡病的致病菌。aba:实验组;b:对照组。图2 枳壳溃疡病病原菌的分离图3 枳壳溃疡病病原菌的纯化abcdefa、b、c:接种致病菌7、14、21d后叶片的发病症状;d、e、f:接种无菌水7、14、21d后叶片的发病症状。图4 枳壳溃疡病致病性测定结果2.4 病原菌的形态学观察将分离的枳壳溃疡病致病菌在NA培养基上进行活化,28培养2448h后进行微观形态(图6a)和培养性状(图6b)的观察。枳壳溃疡病致病菌呈短杆状,革兰氏阴性菌,其在NA平板上生长,菌落为黄色,近圆形,中间凸起,边缘光滑,较粘稠。aba:接种前病原菌形态;b:接种后病原菌形态。图5 发病组织病原菌再分离2
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