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实时荧光定量PCR检测限的统计推断【摘要】 检测限是检测方法的重要性能指标，用Poisson分布的概率函数分式计算一次抽样检测出现的结果推论总体出现该结果的概率。以实时荧光定量PCR(FQPCR)检测乙型肝炎病毒DNA结果为例，计算可知，一次抽样反应管的检测结果4时，才可推论总体与0(空白)差异有显着性()。因而检测血清中病原体时扩增反应管中的检测限是4拷贝/ul计算也可知，1拷贝/ul表示一次抽样的结果为0的概率可达，结果在0拷贝/ul4拷贝/ul的概率为，而1000拷贝/ml表示一次抽样结果为0的概率为0。结果在905拷贝/ml1 095拷贝/ml的概率为；而100 000拷贝/L表示一次抽样结果在997 000拷贝/L1 003 000拷贝/L的概率为。抽样单位ul不能随意放大为ml甚至L。【关键词】 实时荧光定量PCR；检测限；统计推断Statistical Conclusion of Limit of Quqntitation in Realtime Fluorescence Quantitative PCRAbstract:Limit of quantiation is a important performance index of assayof sample drawing are calculated through possiblity function equation of Poisson distribution,then the possibility of results emerged in population isexample,in Realtime Fluorescence quantitaive PCR to assay HBV DNA,only when sample drawing results4,significance of difference()could be deduced between population andlimit of quantitation is 4 copies/ul denoting 0 in one sample drawing is 0,and Possibility of results between 905 copies/ml to 1095 copies/ml isof 100 000 copies/L denoting results between 997 000 copies/L to 1 003 000 copies/L in one sample drawing isdrawing unit ul could not be replace by ml or L.Key words：Realtime Fluorescence quantitative PCR；Limit of quantitation; Statistical conclusion检测限是检测方法的重要性能指标，只有在检测报告中明确表达了检测方法的检测限，该检测报告在各实验间及同一项目的各种检测方法间才可进行比较。能检测到的最低分析物浓度为检测系统的检测限。当前，检测限术语混乱，如：灵敏度(sensitivity)、分析灵敏度(analllytical sensitivity)、定量限度(limit of quantitqtion)等1。每个词语的实际含义中包含有各自的实验方式、数据处理方式及由数据作出的推论等。我们采用统计学方法，以期得到一致的实时荧光定量PCR(Realtime fluorescence quantitative polymerase chain reaction,FQPCR)检测限，现介绍如下。1 文献中FQPCR检测限的描述检测乙型肝炎病毒DNA的文献中检测限使用了“最低检出量”2，3、灵敏度57等术语，它等于已知的高拷贝HBV DNA血清10倍系列稀释后能检测到扩增曲线的最大稀释倍数管浓度。表述有：阴性HBV DNA106拷贝/升4；荧光定量PCR法检测灵敏度102拷贝/ml5、104拷贝/ml6、102拷贝/ml7；HC法检测灵敏度105拷贝/ml7；103 Eq/ml理论值时到达检测极限3；PCRFP检测HBV DNA的最低检测出量1101拷贝2；bDNA在105 Eq/ml时到达检测极限3。以上检测限术语各不相同，且同一方法检测HBV DNA在上述各实验室发出同样的“HBV DNA低于检测下限”的报告时其实际HBV DNA拷贝数相差可达100倍。2 FQPCR检测过程简介以测定血清乙型肝炎病毒DNA为例：将40 l血清样本加40 l DNA提取液处理后，将其中2 l加入主反应液管中，在自动热循环上进行温度循环，自动热循环仪记录每一反应管在每一次温度循环的荧光强度，记30次温度循环后结束。在PCR循环过程中，每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数称为Ct值。当30次循环后某一待测管仍检测不到高于基线水平的荧光信号时，仪器默认Ct值为30，不计算起始拷贝。3 确定FQPCR检测限的统计学原理如果被检物的含量和检测方法的空白响应量的波动服从正态分布规律，则检测限可用多次检测空白的方法来确定。可信限为95%时检测限x空白+空白；可信限为%时检测限=x空白+空白。这是目前多数检测限的确定方法。对核酸检测方法的检测限的理解可能与此有差别，但是原理应是一致的1，FQPCR检测限也应是推论总体与空白有统计学差异的最小抽样结果。4 FQPCR检测限的统计推断假设病原体在血液等体液中的分布是随机的，则单位体积中(如 l)病原颗粒数的分布服从Poisson分布。以Poisson分布的概率函数公式计算一次抽样检测出现的结果推论总体概率。从理论上来说，使用PCR测定技术测定病原体核酸序列的量可低至1个拷贝2。例如：血清标本中加入等量的DNA提取液，于离心管中煮沸，4 放置，离心，吸取上清液2 l作模板 进行扩增检测(2 l上清液相当于抽样1 l血清)2，其中至少有1个拷贝的HBV DNA才能有典型扩增反应，这时检测结果是1拷贝/l。由Poisson分布的概率函数公式可计算出1次抽样检测结果出现0时，推断总体为19的概率见表1。表1 总体为19时抽样为0的概率及总体在FQPCR检测HBV DNA中，当30次循环后某一待测管仍检测不到高于基线水平的荧光信号(即当Ct30)，反应管检测结果为0时，推论总体拷贝数为19的概率之和 92，总体为其他的概率之和(此时报告0拷贝的可信限度低于50%)。总体为1时一次抽样结果分别为19时的概率见表1。当一次抽样结果4时，推论总体为1的概率 33，所以对于病原体的检测，一次抽样反应管检测结果4拷贝时，才可推论总体与0(空白)差异有显着性()。因而上述检测血清中病原体时一次抽样反应管的检测限是4拷贝/l。当总体为1、2、3时一次抽样结果为0的概率分别是 88、 34、 79。如室间质量评价样本靶值选择1拷贝/l、2拷贝/l、3拷贝/l时，无论实验室实际检测质量如何高，都将有%、%、%的实验室检测结果为0而被判为不符合，而报告结果的单位是ml甚至L。当总体为1拷贝/l时表示一次抽样结果为0的概率达，结果在0拷贝/l4拷贝/l的概率为；而总体为1 000拷贝/ml时表示一次抽样结果为0的概率为0，结果在905拷贝/ml1 095拷贝/ml的概率为(Poisson分布总体50时近似正态分布，范围是Xu*X，可信限为%时u=3);总体为100 000拷贝/L时表示一次抽样结果在997 000拷贝/L1 003 000拷贝/L的概率为。文中推理以HBVDNA的FQPCR检测为例，其他病源体核酸的FQPCR检测也与其相同，检测限是抽样反应管的检测限4拷贝/反应管；如反应管中加入模板量相当于 l血清则检测限相当于拷贝/ l。此推断仅是针对FQPCR技术本身的检测限度，未就临床上有意义的最小病源体核酸的拷贝数进行讨论。【参考文献】 1 冯仁丰.分析灵敏度(检测限)J.上海医学检验杂志，2002，17(3)：133134. 2 郭晏海，张菊，赵锦荣，等.聚合酶链反应荧光偏振技术在乙型肝炎病毒DNA检测中的应用及价值J.中华检验医学杂志，2004，27(1)：2627.3 张东华，金根娣，陆志檬.二种分子杂交技术定量检测临床标本中HBV DNA的比较J.上海医学检验杂志，2003，18(3)：163164.4 何敏，杨朝霞，刘微，等.HBV DNA定量检测方法的评价J.国外医学临床生物化学与检验学分册，2005，26(2)：123124.5 刘停，韩亚萍，张永祥.荧光定量PCR检测慢性乙型肝炎患者血清HBVDNA及其意义N.南京医科大学学报，2003，23(1)：7879.6 黄希田，颜鸣鹤，凌乔，等.定量PCR微流芯片法定量检测血清HBV DNA含量.中国感染控制杂志，2003，2(2)：8991.7 王豪，陶其敏，吴娟，等.两种乙型肝炎病毒DNA定量检测方法的比较与评价J.中华检验医学杂志，2002，25(5)：318320.8 李金明，邓巍，王露楠，等.PCR测定乙型肝炎病毒DNA弱阳性质控血清的适用性研究J.临床检验杂志，2000，18(1)：67.9 Mancini C,Pisani G,Azzi A,et labortory comparison of qualitative detection of hepatitis C(HCV)virus RNA in diagnostic virology:a multicente study (MS)in ItalyJ.J Clin Virol，2004，30(4):313319.10 Raggi CC,Verderio P,Pazzagli M,etItalian program of external control for quantitative assays based on realtime PCR with TaqMan probesJ.Clin Chem Lab Med，2005，43(5)：542548.