高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化.pdf
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1、第 29 卷 第 13 期 农 业 工 程 学 报 Vol.29 No.13 286 2013 年 7 月 Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering Jul.2013 高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化 刘成国1,2,易文芝1,周 辉1,2(1.湖南农业大学食品科学技术学院,湖南 长沙 410128;2.食品科学与生物技术湖南省重点实验室,湖南 长沙 410128)摘 要:益生菌发酵乳中的活菌数是保证其功能特性的关键因素,为提高益生菌发酵乳中的活菌总数,以干酪乳杆菌和双歧杆菌复合菌种为试验对象,以发酵过程中的
2、pH 值和吸光度平均值OD值为试验指标,在单因素试验的基础上,利用 Box-Benhnken 中心组合试验和响应面分析法研究了接种量、益生菌接种比例、发酵温度、葡萄糖添加量以及大豆多肽添加量对发酵乳 pH 值和活菌数的影响,并建立了复合益生菌发酵模型。响应面优化试验结果表明复合益生菌发酵的最佳工艺条件是脱脂乳乳固体质量分数为 12%,接种量为 6%,干酪乳杆菌:双歧杆菌接种体积比为 31,葡萄糖添加量为 2.9%,大豆多肽添加量为 0.8%,发酵温度为 34,在此条件下OD预测值为 1.076,验证试验得到实际OD值为 1.087,与理论预测值相比,相对误差为 1.0%。发酵乳最大活菌数为 4
3、.11011 cfu/mL,与已有研究相比,活菌数提高了 12 个对数级。在 4条件下贮藏 21 d 后,发酵乳的活菌数仍然保持在4.71010 cfu/mL。研究结果为工业化生产高活菌数的益生菌饮料提供参考。关键词:发酵,优化,模型,益生菌,干酪乳杆菌,双歧杆菌 doi:10.3969/j.issn.1002-6819.2013.13.036 中图分类号:Q939.11+7 文献标志码:A 文章编号:1002-6819(2013)-13-0286-11 刘成国,易文芝,周 辉.高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化J.农业工程学报,2013,29(13):286296.Liu Chengguo,Y
4、i Wenzhi,Zhou Hui.Optimization of fermentation conditions of milk with blend probiotic strains based on high viable countJ.Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering(Transactions of the CSAE),2013,29(13):286296.(in Chinese with English abstract)0 引 言 益生菌是一类可通过改变肠道菌群平衡而对动物产生有利影响的
5、活微生物添加剂,并广泛应用于食品生产中1-2。益生菌不仅可加工成为各种食品通过消化道产生有益功效,还可以外用于同样存在固有菌群的泌尿系统和皮肤3。研究发现4-5,益生菌在人体肠道内的存活和增殖对益生菌发挥保健功效起到决定性作用,要获得理想的治疗效果,益生菌必需达到足够多的数量。然而,益生菌最大的缺点是活菌期时间短6。在加工过程和贮藏期间保证其存活和保持生物活性仍是益生菌产品面临的挑战之一7。益生菌进入人体并发挥重要功效的主要产品载体是益生菌发酵乳。市场上的益生菌乳饮料普遍含菌数量少,随着货架期延长,益生菌数量逐渐下降8-9。相关研究表明,有些市售产品货架期结束后活菌数可达 90%的衰减10。因
6、此,提高发酵乳中的活菌数是目前益生菌乳饮料需要解决的重大技术难题之一。收稿日期:2013-04-17 修订日期:2013-06-07 基金项目:国家自然科学基金(31101334)作者简介:刘成国(1964),男(汉族),湖南常德人,副教授,研究方向为农产品加工及质量控制。长沙 湖南农业大学食品科技学院,410128。Email: 目前相关研究主要集中在某一成分或发酵条件的探究,对于系统地研究整个发酵体系,包括发酵条件、营养物质之间的相互作用尚无文献报导。本试验将乳酸菌高密度培养技术应用于发酵乳的发酵工程中。为实现益生菌的高密度培养,应提供一个适宜环境供其生长,包括温度,溶氧量,营养条件11等
7、。而发酵乳的发酵过程中,提供营养的主要为牛乳,牛乳的乳糖不足以满足益生菌生长的需求,葡萄糖能为菌种生长提供额外的能源物质12。大豆多肽是大豆蛋白质的酶分解产物,具有促进菌种繁殖和代谢的作用13。将葡萄糖和大豆多肽添加到牛乳中作为菌种的生长因子,同时研究发酵温度、益生菌(干酪乳杆菌:双歧杆菌)比例、接种量等发酵条件对益生菌生长的影响。相关研究表明,复合菌种发酵存在共生机制时,其发酵能力要优于单菌种发酵14;而干酪乳杆菌和双歧杆菌复合发酵的产酸能力和活菌数都明显高于其他复合菌种。为简化生产工艺、缩短生产周期,本试验选择直投式干酪乳杆菌和双歧杆菌为研究对象。在单因素试验基础上,利用 Box-Benh
8、nken 中心组合试验和响应面分析法建立干酪乳杆菌和双歧杆菌复合益生菌发酵的数学模型15。通过优化发酵条件,提高益生菌发酵乳中的活菌数,为工业化生产高活菌数的益生菌饮料提供技术支持。第 13 期 刘成国等:高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化 287 1 材料与方法 1.1 试验材料 1.1.1 菌种 干酪乳杆菌:丹麦科汉森有限公司;双歧杆菌:丹尼克斯(中国)有限公司。1.1.2 材料与试剂 脱脂奶粉:新西兰恒天然脱脂奶粉;大豆多肽:陕西汇能达生物科技有限公司;葡萄糖,市售一级;MRS(de Man,Rogosa and Sharpe)合成培养基:广东环凯微生物科技有限公司;氢氧化钠、乙二胺四乙酸
9、(Ethylenediamine Tetraacetic Acid,EDTA),均为分析纯。1.1.3 仪器与设备 SW-CJ-1FD 型单人单面净化工作台:苏州净化设备有限公司;MJ-250BS-型霉菌培养箱:上海新苗医疗器械制造有限公司;101 型电热鼓风干燥器:北京市永光明医疗器械厂;S20 型 pH 计:梅特勒-托利多仪器有限公司;722S 型可见分光光度计:上海精密科学仪器有限公司。1.2 试验方法 1.2.1 接种菌液的制备 称取干酪乳杆菌、双歧杆菌冻干发酵剂各 1 g,分别投放于 99 mL 的灭菌脱脂奶中,摇匀,制成菌含量为 1%的接种菌液。发酵接种量以接种的脱脂乳体积计算。1
10、.2.2 复合益生菌发酵乳制备工艺流程 脱脂奶粉+葡萄糖+水等6065溶解110杀菌 15 min冷却至 37左右接种发酵冷却至 154冷藏16 1.3 试验内容与设计 1.3.1 复合菌体最适吸收波长的确定 在脱脂乳乳固体质量分数为 12%的条件下,110灭菌 15 min 后制得灭菌乳。在此基础上,发酵温度为 37,干酪乳杆菌和双歧杆菌接种体积比为 11,接种量为 6%的条件下发酵 24 h,制得发酵乳。以去离子水为对照调零,取灭菌乳和发酵乳分别稀释 10 倍,在不同波长下用 1 cm 的光径比色皿测定吸光度(optical delnsity,OD),以此来分析最适吸收波长17。1.3.2
11、 复合菌种发酵的单因素试验 1)益生菌接种量确定 以干酪乳杆菌、双歧杆菌为试验对象,在益生菌接种体积比为 11,发酵温度为 37,葡糖糖的添加量为 2.5%,大豆多肽的添加量为 0.6%,脱脂乳乳固体质量分数为 12%的条件下,研究不同的接种量(2%、4%、6%、8%、10%)对发酵乳的产酸量和活菌总数的影响,以每种发酵条件下测定的OD值和最终 pH 值做为试验指标。2)益生菌接种比例的确定 其他发酵条件不变,接种量为 1.3.2.1 确定的最佳接种量,研究干酪乳杆菌:双歧杆菌接种体积比(LB=11、12、13、21、31)对发酵乳产酸量和活菌数的影响,以每种发酵条件下测定的OD值和最终 pH
12、 值为试验指标。3)葡萄糖添加量的确定 其他发酵条件不变,接种量为 1.3.2.1 确定的最佳接种量,益生菌接种体积比为 1.3.2.2 确定的最佳比例,研究葡萄糖的不同添加量(1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%)对试验结果的影响,以每种发酵条件下测定的OD值和最终 pH 值做为试验指标。4)大豆多肽添加量的确定 其他发酵条件不变,接种量、益生菌接种体积比、葡萄糖的添加量均为上述确定的最佳水平,研究大豆多肽的不同添加量(0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%)对试验结果的影响,以每种发酵条件下测定的OD值和最终 pH 值为试验指标。5)发酵温度的确定 发酵条件均为上述单因素试验
13、选出的最佳水平,研究不同的发酵温度(25、29、33、37、41)对试验结果的影响,以每种发酵条件下测定的OD值和最终 pH 值为试验指标。1.3.3 响应面法优化复合益生菌发酵技术的试验 对单因素试验结果进行显著性分析,选出差异显著的因素为 Box-Benhnken 设计的自变量,以发酵乳的OD值为响应面,通过响应面分析与模型的建立对复合益生菌发酵条件进行优化18-20。1.4 主要指标的测定方法 1.4.1 酸度的测定 pH 值:采用 S20 型 pH 计直接测定。1.4.2 OD 值的测定 乳酸菌生长动力学研究发现菌体的吸光度值与菌体的显微镜直接计数值之间呈相关关系,因此可以采用测定OD
14、值的方法来评定发酵乳的活菌数21。本试验根据发酵乳中钙离子在碱性条件下与盐类络合而使发醉乳均匀分散成溶液状态的原理,选取乙二胺四乙酸(EDTA)为螯合剂,络合发酵乳中的钙离子,使待测溶液变澄清,其测定步骤如下:试管中加入 1 mL 的发酵乳加入 9 mL 0.2%的EDTA溶液调节pH值至12左右混匀并静置5 min以灭菌乳作为空白对照调零在最适波长处测定吸光度值菌体进入稳定期后 OD 值变化不明农业工程学报 2013 年 288 显22,此时发酵乳中的活菌数达到最大值。试验从发酵 48 h 起 OD 值变化不大。据此,从发酵 48 h开始,连续 3 d 测定 OD 值,以每种发酵条件下测定的
15、吸光度平均值(The Average Optical Delnsity,OD)做为试验指标。2 结果与分析 2.1 菌体最适吸收波长的确定 灭菌乳和发酵 24 h 后的脱脂乳在不同波长下的 OD 值如图 1。从图中可以看出,350430 nm之间,发酵乳的吸光度比较大,但灭菌乳的吸光度也很大,所以透过比色皿的很大一部分光束被灭菌乳所吸收,影响了菌体的吸光度。在 540660 nm之间,虽然灭菌乳本身的吸光度很小,但是发酵乳的吸光度也不大。波长在 450500 nm 之间,灭菌乳的吸光度不大,但发酵乳的吸光度较大,在此波段中,发酵乳和灭菌乳差值最大的一组为 460 nm。因此选择该复合菌体的最适
16、吸收波长为 460 nm。李学贵,袁生报道的微生物转化过程中利用 OD 值实时监测细菌生物量变化的研究17一文中测定的假单胞菌最大吸收波长为 470 nm,与本试验测定的复合菌体的最适吸收波长相差不大。图 1 发酵乳和灭菌乳在不同波长下的 OD 值 Fig.1 OD value of fermented milk and sterilized milk at different wavelengths 2.2 单因素试验结果与分析 2.2.1 接种量对发酵乳活菌数的影响 试验研究了不同接种量对发酵乳 pH 值和OD值的影响,试验结果见图 2。pH 值表示发酵过程的产酸量,预试验结果表明,当发酵
17、结束后 pH 值达到 3.6 左右时,则在益生菌乳饮料的调配过程中不需要额外添加酸味剂。OD值表示发酵乳中的活菌数,OD越大,发酵乳的品质也就越高。从图中可以看出,当接种量大于 6%时,发酵乳的OD变化不明显。pH 值随接种量的增加呈现先下降后变化不大的趋势。当接种量为 6%时,发酵乳的OD值为0.878,pH 值为 3.20。考虑生产成本的节约,选择接种量为 6%为此单因素试验的最佳水平。采用方差分析法对发酵乳的OD值进行显著性分析,结果表明接种量对OD值的影响不显著(P0.05)。因此在响应面试验中,不将接种量列为试验因素。注:干酪乳杆菌与双歧杆菌的接种体积比为 11,发酵温度为 37,葡
18、糖糖的添加量为 2.5%,大豆多肽的添加量为 0.6%。Note:Ratio of Lactobacillus casei and Bifidobacterium was 1:1,fermentation temperature was at 37,glucose level was 2.5%,soybean peptide level was 0.6%.图 2 不同接种量对发酵乳的 pH 值和OD值的影响 Fig.2 Effect of different inoculation volume on pH value and average OD value of fermented mil
19、k 2.2.2 益生菌接种比例对发酵乳活菌数的影响 试验研究了不同益生菌接种比例(LB)对发酵乳 pH 值和OD值的影响,试验结果见图 3。注:接种量为 6%,发酵温度为 37,葡糖糖的添加量为 2.5%,大豆多肽的添加量为 0.6%。Note:inoculation volume was 6%,fermentation temperature was at 37,glucose level was 2.5%,soybean peptide level was 0.6%.图 3 不同益生菌比例对发酵乳的 pH 值和OD值的影响 Fig.3 Effect of different ratio o
20、f probiotics strains on pH value and average OD value of fermented milk 从图 3 中两条曲线可以看出,发酵乳的 pH 值和OD值成线性关系,OD值越大所对应的 pH 值就越小。当干酪乳杆菌:双歧杆菌的比值小于 2 时,发酵乳的OD值随着干酪乳杆菌:双歧杆菌的比值增大而上升。当干酪乳杆菌:双歧杆菌比例为 21时,OD值为 0.927,pH 值为 3.18,此条件下的发酵乳活菌总数和产酸量均最大。当干酪乳杆菌:双第 13 期 刘成国等:高活菌数复合益生菌发酵乳工艺优化 289 歧杆菌比例为 31 时,OD值下降。为进一步检验不
21、同益生菌比例对发酵乳活菌总数的影响是否显著,对试验结果进行单因素方差分析,方差分析的结果为 P0.01,所以不同接种比例下的OD差异极显著。因此在益生菌比例单因素试验中,选择干酪乳杆菌双歧杆菌=21 为最佳水平。2.2.3 葡萄糖添加量对发酵乳活菌数的影响 试验研究了不同葡萄糖添加量对发酵乳 pH 值和OD值的影响,试验结果见图 4。由图中可以得到,发酵乳的OD值和 pH 值先随葡萄糖的增加几乎呈直线上升和下降的趋势,当添加量 3%时,OD值为 1.031,pH 值为 3.19,此条件下的发酵乳产酸量和活菌总数均达到最大值。当葡萄糖含量继续增加,产酸量和活菌总数反而出现下降的趋势。在发酵过程中
22、,菌体大量繁殖,利用乳糖和葡萄糖做为能源物质23。当发酵乳中添加的葡萄糖不足以提供菌体繁殖所需要的能源物质时,菌体的繁殖受到影响。当发酵乳中的葡萄糖浓度过大时,菌体的生长也将受到抑制。采用方差分析法对发酵乳的OD值进行显著性分析,方差分析的结果表明葡萄糖添加量对OD值有极显著影响(P0.01)。此单因素试验中,最佳水平是葡萄糖的添加量为 3.0%。注:接种量为 6%,干酪乳杆菌与双歧杆菌的接种体积比为 21,发酵温度为 37,大豆多肽的添加量为 0.6%。Note:inoculation volume was 6%,the ratio of Lactobacillus casei and Bi
23、fidobacterium was 2:1,fermentation temperature was at 37,soybean peptide level was 0.6%.图 4 葡萄糖添加量对发酵乳的 pH 值和OD值的影响 Fig.4 Effect of different glucose contents on pH value and average OD value of fermented milk 2.2.4 大豆多肽添加量对发酵乳活菌数的影响 试验研究了不同大豆多肽添加量对发酵乳 pH值和OD值的影响,试验结果见图 5。从图中可以得到,发酵乳的活菌总数和产酸量先随大豆多肽添
24、加量的增加而变大,当添加量达到 0.8%时,OD值为 1.067,pH 值为 3.17,此条件下的产酸量和活菌总数最大。当大豆多肽添加量大于 0.8%时,发酵乳的产酸量和活菌总数变化不明显。由于乳酸菌的蛋白水解能力弱,牛乳中酪蛋白形成的短肽和氨基酸不能完全满足乳酸菌高密度生长的需要24,将一定量的大豆多肽添加到牛乳中可为乳酸菌的生长提供足够的氮源,从而大幅度提高菌体数量。当牛乳中的大豆多肽继续增加时,菌体利用大豆多肽做为营养物质已达到限度,所以活菌总数和产酸量变化并不明显。为考查大豆多肽添加量对发酵乳活菌总数的影响是否显著,对试验结果进行单因素方差分析,不同大豆多肽添加量下的OD差异极显著(P
25、0.01)。此单因素试验中,最佳水平是大豆多肽的添加量为 0.8%。注:接种量为 6%,干酪乳杆菌与双歧杆菌的接种体积比为 21,发酵温度为 37,葡萄糖的添加量为 3%。Note:inoculation volume was 6%,the ratio of Lactobacillus casei and Bifidobacterium was 2:1,fermentation temperature was at 37,glucose level was 3%.图 5 大豆多肽添加量对发酵乳的 pH 值和OD值的影响 Fig.5 Effect of different soybean pep
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