蛋白提取步骤.doc
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1、 . 提蛋白及WB的步骤整个过程细胞或蛋白都必须放冰上准备工作:前一天准备:借钥匙、检查细胞裂解液相关试剂是否充足、当天准备:洗玻璃板、开紫外,冰块、碎冰、标记1.5ml 离心管及0.6ml离心管、细胞刮板、开低温高速离心机细胞裂解液配制:1ml cell lysis10ul NP-40(离心机后)25ul 焦磷酸钠40ul NaF1ul -甘油磷酸2 ul Na3VO41ul 蛋白酶抑制剂(用完即放回冰箱)10ul PMSF(最后加,随加随用,有毒)细胞裂解和收集1. 观察细胞状态,并准备提蛋白:吸走培养基、用PBS洗细胞两次(倾斜贴壁加PBS,左右轻轻摇),倾斜贴壁吸走PBS。2. 将细胞
2、盘拿到外间冰上,加裂解液(体积网上推荐:一般106加0.1ml ),冰上静置1-2min。3. 刮细胞:细胞刮板每次用之前拿水涮一涮,甩干,然后从中间到外面打圈刮,再从下往上,从上往下全面刮,(刮的时候要迅速),最后用枪吸取裂解液至离心管。细胞破碎4. 超声波破碎细胞:准备三个小烧杯,加满冰块,三个小夹子。(超声波破碎仪的铁棒不要碰到离心管的壁和底部)超声波设置:工作功率5% 工作时间3min 开机时间15s,关机时间30s 温度0度,报警温度1度5. 4、13000r/min,离心15min。(离心机用后一直保持打开的状态,)蛋白保存6. 蛋白保存及分装:吸上清液至0.6ml离心管,涡旋、吸
3、一半至另一个管中,涡旋。-80保存。注意事项:PMSF一定要现用现加,PMSF在水溶液中不稳定,30min内就会降解一半。样品处理超过1h,补加一次。BCA测定蛋白浓度1、 测空白板,选差异较小的孔。BCA测定法波长 570,Bracford:5952、 标准蛋白的稀释(5mg/ul):分装1ml PBS来使用,稀释标准蛋白至0.5mg/ul。取5ul标准蛋白+45ul PBS3、 加样:浓度00.10.20.30.4BSA(ul)0481216PBS(ul)201612844、 样品蛋白稀释20倍:2ul蛋白+18ul PBS5、 配BCA:每个孔200ul,一个样品2个重复,A:B=50:
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