狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗免疫效果评价.pdf
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1、研究论文Chinese Journal of Animal Infectious Diseases中国动物传染病学报摘 要:狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病是当前危害养犬业的三种重要传染病。为探讨狂犬病毒(RABV)、犬瘟热病毒(CDV)和犬细小病毒(CPV)灭活制备三联灭活疫苗的可行性,将该3种病毒HEP-Flury株、LN(10)1株和JL(18)1-Beagle株分别在BHK-21、Vero/DogSLAM(VDS)和F81细胞培养,经-丙内酯灭活剂灭活后,分别与三种不同类型免疫佐剂(MONTANIDE GEL 02、ADJ-801(W)、Al(OH)3)配制成三联灭活疫苗。疫苗经三次免疫比
2、格犬后,通过测定动物血清抗体水平和攻毒保护情况评价其免疫效果。实验结果显示,不同佐剂的三联灭活疫苗对增强比格犬RABV、CDV和CPV血清抗体应答反应效果不同。其中ADJ-801(W)佐剂能显著提高针对RABV、CDV和CPV三种病毒的抗体水平,疫苗三次免疫比格犬后血清抗体效价分别为7.4 EU/mL、150和11024;而Al(OH)3佐剂效果较差,三免后抗体效价分别为4.01 EU/mL、16和1256。疫苗三次免疫后,分别应用强毒CDV SD(14)7株和CPVJL(18)1-Beagle株对比格犬进行攻毒实验,实验结果显示,ADJ-801(W)组对SD(14)7和JL(18)1-Bea
3、gle攻毒保护率均为100%,MONTANIDE GEL 02组攻毒保护率均为60%,而Al(OH)3组攻毒保护率均为0,表明ADJ-801(W)佐剂制备的狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗对比格犬提供较好的免疫保护作用。本研究为犬狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗的研制奠定了基础。关键词:狂犬病病毒;犬瘟热病毒;犬细小病毒;灭活疫苗;佐剂中图分类号:S858.292 文献标志码:A 文章编号:1674-6422(2023)03-0082-09Evaluation of the Effi cacy of Inactivated Triplex Vaccine of Rabies-C
4、anine Distemper-Canine Parvovirus GONG Chengyan1,2,CHEN Jie3,PAN Hongjun1,4,LUO Guoliang1,LIU Mengjia5,HU Bo1,ZHAO Jianjun2(1.Key Laboratory of Special Animal Epidemic Disease of Ministry of Agricultural rural affairs,Institute of Special Economic Animal and Plant Sciences,CAAS,Changchun 130112,Chin
5、a;2.College of Animal Science and Veterinary Medicine,Heilongjiang Bayi Agricultural University,Daqing 163319,China;3.College of Veterinary Medicine,Northwest A&F University,Yangling 712100,China;4.College of Traditional Chinese Medicine,Jilin Agricultural University,Changchun 130118,China;5.Jinan C
6、ustoms District,Jinan 250200,China)收稿日期:2020-12-27基金项目:国家重点研发计划项目(2017YFD0501600);黑龙江八一农垦大学引进人才科研启动计划(XYB201912);国家自然科学基金(31972714)作者简介:龚成燕,女,硕士,主要从事动物病原学研究;陈杰,男,博士,主要从事动物病原学与免疫机制研究通信作者:赵建军,E-mail:;胡博,E-mail:狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗免疫效果评价龚成燕1,2,陈 杰3,潘虹军1,4,罗国良1,刘梦佳5,胡 博1,赵建军2(1.中国农业科学院特产研究所 农业农村部经济动物疫病重
7、点实验室,长春 130112;2.黑龙江八一农垦大学动物科技学院,大庆 163319;3.西北农林科技大学,杨凌 712100;4.吉林农业大学中药材学院,长春 130112;5.济南海关,济南 250200)2023,31(3):82-90Abstract:Rabies,canine distemper and canine parvovirus disease are three important contagious diseases,threatening the dog-raising industry.To evaluate the immunogenicity of inact
8、ivated triplex Rabies virus(RABV),Canine distemper virus(CDV),Canine parvovirus 83 龚成燕等:狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗免疫效果评价第 31 卷第 3 期狂犬病是由弹状病毒科(Rhabdoviridae)狂犬病毒属(Lyssavirus)的狂犬病病毒(Rabies virus,RABV)引起的急性中枢神经系统症状的人兽共患传染病1。RABV可以感染几乎所有温血哺乳动物,对公众健康具有重大威胁,狂犬病造成死亡人类中99%以上是由感染家养犬咬伤造成的,目前国内犬类狂犬病发病率仍在不断上升2。犬瘟热是由副
9、黏病毒科(Paramyxoviridae)麻疹病毒属(Morbillivirus)的犬瘟热病毒(Canine distemper virus,CDV)感染引起的一种热性、高度接触性传染病3。其自然宿主近些年来不断扩增,包括犬科、鼬科、浣熊科等,甚至可能具有感染人的潜在风险4-5。CDV通过口鼻入侵宿主,并迅速在淋巴组织中复制,引起感染动物严重的免疫抑制6。犬细小病毒病是由细小病毒科(Parvoviridae)细小病毒属(Parvovirus)的犬细小病毒(Canine parvovirus,CPV)感染引起的一种急性、致死性传染病7。犬细小病毒于1978年首次在澳大利亚和美国被发现,并在几个月
10、内传播到世界各地8,CPV主要感染幼龄犬,短时间潜伏期后可引起严重的出血性胃肠炎症状,白细胞显著减少为其临床特征,并具有高传染性和高致死率9-10,对养犬业造成了较大的损失。狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病严重影响着犬科动物的健康,目前解决这些问题最有效、直接的方法是疫苗接种。狂犬病活病毒疫苗通常比灭活疫苗能更好地保护犬11,但弱毒活疫苗可能因毒力返强而致病,并对免疫系统不健全或抑制状态的犬造成潜在风险12,基因工程疫苗研制周期较长且不能完全控制流行毒株13。1911年,Liu等14首次通过活体脑内增殖RABV,并用石炭酸做灭活剂来制备灭活RABV疫苗,后期发现在体外BHK-21细胞上繁殖RABV
11、具有同等效力;1923年,Franke等15用感染犬的脑组织灭活后首次研制出犬瘟热灭活苗,但免疫犬不能有效抵抗CDV强毒株攻击,后期发现在Vero细胞上培养的减毒CDV免疫原性要高于组织灭活疫苗16。1981年,Smith等17首次用CPV灭活疫苗免疫犬,免疫犬虽获得攻毒保护,但不能完全阻止免疫犬排毒。随着CDV受体信号淋巴细胞激活分子(signaling lymphocytic activation molecule,SLAM)的鉴定,稳定表达犬SLAM受体的细胞系,如Vero/DogSLAM(VDS)细胞,可用增殖CDV弱毒株和野毒株,增殖后病毒效价大大提高18-20,从而解决了CDV在体
12、外细胞中增殖效价不高,制备灭活疫苗免疫原性低的问题。在灭活疫苗中加入佐剂,可以延长疫苗的免疫保护期,促进机体特异免疫应答反应。目前,已研究的佐剂种类非常多,根据其来源可分为化合物和天然物两大类21。市场上犬用疫苗佐剂多为合成的水佐剂和油佐剂,有研究结果显示油佐剂疫苗相对于水佐剂疫苗,相同时间内,油佐剂疫苗免疫犬产生的抗体水平较低22。李敏等13制备的佐剂MONTANIDE GEL 01犬细小病毒灭活疫苗连续两次免疫幼犬后,有效抗体可维持5个月;舒秀伟等23发现铝胶(Al(OH)3)佐剂灭活疫苗(Flury株)免疫动(CPV)emulsifi ed with three adjuvants MO
13、NTANIDE GEL 02,ADJ-801(W)and Al(OH)3,the HEP-Flury,LN(10)1 and JL(18)1-Beagle strains of these viruses were cultured on BHK-21,Vero/DogSLAM(VDS)and F81 cells and inactivated by-propiolactone,respectively.Then inactivated viruses were mixed and emulsifi ed with each of adjuvants MONTANIDE GEL 02,ADJ-
14、801(W)and Al(OH)3.Beagles were immunized with different triplex inactivated vaccines three times and challenged afterwards.Blood samples were collected at different times.The results demonstrated that the inactivated triplex vaccines with different adjuvants had varying effects on enhancing the anti
15、body titers of CDV,CPV and RABV.The vaccine with ADJ-801(W)adjuvant signifi cantly induced the serum antibody responses and the antibody titers of CDV,CPV and RABV were 7.4 EU/mL,150 and 11024,respectively.In contrast,adjuvant Al(OH)3 showed poor enhancement as the antibody titers of CDV,CPV and RAB
16、V were 4.01 EU/mL,1 6 and 1256,respectively.Subsequently,beagles were challenged with virulent CDV(SD(14)7)or CPV(JL(18)1-Beagle)strain.The inactivated triplex vaccines with ADJ-801(W)provided 100%protection while the vaccine with MONTANIDE GEL 02 produced 60%protection.The vaccine with Al(OH)3 had
17、no protection.In conclusion,this study laid a foundation for the development of an inactivated triplex vaccine against rabies-canine distemper-canine parvovirus disease.Key words:Rabies virus;Canine distemper virus;Canine parvovirus;inactivated vaccine;adjuvant 84 中国动物传染病学报2023 年 6 月物后能提高狂犬病病毒抗体效价,增
18、强疫苗的免疫效果;张菲等24在制备猫用RABV灭活疫苗时采用特制的水包油佐剂,发现其可显著提高疫苗的免疫效力。目前,我国商品化联苗中尚未有获批的狂犬病-犬瘟热-犬细小病毒病三联疫苗上市。尤其是狂犬疫苗,目前多为单独免疫25-26,导致在免疫预防过程中需要重复对动物进行免疫接种,不但增加了工作强度,也容易造成动物的应激反应。犬瘟热疫苗多为弱毒疫苗,免疫原性虽高于灭活疫苗,但灭活疫苗相对活毒疫苗具有更好的安全性27。因此,本研究旨在通过比较不同佐剂对狂犬病-犬瘟热-细小病毒病三联灭活疫苗的免疫效果,从而开发出一种安全、有效的犬用三联灭活疫苗,可同时针对狂犬病、犬瘟热与细小病毒病三种犬病提供免疫保护
19、。1 材料与方法1.1 细胞、病毒和实验动物 稳定表达犬SLAM受体的非洲猕猴肾细胞Vero/DogSLAM(VDS)、猫肾细胞(F81)和乳仓鼠肾细胞(BHK-21)由中国农业科学院特产研究所和黑龙江八一农垦大学保存。疫苗生产用CDV野毒株LN(10)128、CPV强毒株JL(18)1-Beagle29、RABV弱毒株HEP-Flury30和病毒攻毒用CDV强毒SD(14)7株由国农业科学院特产研究所和黑龙江八一农垦大学保存鉴定4。实验用6周龄比格犬57只,由中国农业科学院特产研究所比格犬养殖基地提供。1.2 主要试剂 胎牛血清、DMEM细胞培养基购自南京WISENT生物技术公司;ADJ-8
20、01(W)佐剂由河南通商进出口有限公司惠赠,MONTANIDE GEL 02佐剂购自上海SEPPIC生物技术公司,Al(OH)3铝盐佐剂购自吉林正业生物制品有限公司;灭活剂-丙内酯购自Ferak Berlin GmbH公司;狂犬病病毒抗体ELISA试剂盒为北京金诺百泰生物技术有限公司(兽药生字010678829)产品;4%多聚甲醛购自BBI生命科学生物公司;FITC标记的抗RABV N蛋白的单克隆抗体由中国农业科学院特产研究所保存。1.3 病毒培养 待VDS在T-75 cm2细胞培养瓶中长成单层细胞,接种CDV LN(10)1株1 mL(106.0 TCID50/mL),并于37、5%CO2的
21、培养箱中培养72 h,每日观察细胞状态,待细胞病变达到80%左右,反复冻融细胞3次后收取病毒液;将F81细胞均匀铺于T-75 cm2细胞培养瓶中,同时接种CPV JL(18)1-Beagle株1 mL(106.0 TCID50/mL),培养、收毒与检验病毒方法与增殖CDV的方法一致;待T-75 cm2细胞培养瓶BHK-21细胞长成单层细胞时,接种RABV弱毒HEP-Flury株1 mL(105.67 TCID50/mL),并置于37、5%CO2培养箱中进行病毒扩增培养,96 h后通过反复冻融3次后收获病毒液。1.4 病毒含量测定与纯净性检验 将VDS细胞均匀铺于96孔板中,待细胞长成单层时,将
22、待测病毒液LN(10)1以10倍系列稀释到7个梯度(10-110-7),并依次加入96孔板中,每个梯度4个重复孔,置于5%CO2培养箱内37培养4 d5 d,逐日观察细胞病变情况并记录结果,按照Reed-Muench法计算病毒含量22。将F81细胞均匀铺于96孔板中,同时将待测病毒液JL(18)1-Beagle以10倍系列稀释到7个梯度(10-110-7),后续步骤与测LN(10)1方法一致。将BHK-21细胞均匀铺于96孔板中,待细胞长成单层时,将待测病毒液HEP-Flury以10倍系列稀释到7个梯度(10-110-7),依次加入96孔板中,每个梯度4个重复孔,置于37、5%CO2温箱中培养
23、72 h后,PBS温和洗涤2次,4%多聚甲醛4固定细胞30 min,弃液,干燥10 min,加入FITC标记的抗RABV N蛋白的单克隆抗体,37孵育1 h,PBS洗涤3次后,加入适量的80%甘油,荧光显微镜下观察结果31。分别取收获的3种病毒混合液,按中华人民共和国兽药典(2015年版三部)(以下简称中国兽药典)32进行无菌检验和支原体检验。1.5 病毒灭活与疫苗制备 3种病毒分别应用PBS按CDV(106.0 TCID50/mL)、CPV(106.0 TCID50/mL)、RABV(105.67 TCID50/mL)的比例进行病毒抗原液配制,按12000比例加入-丙内酯,彻底混匀后4灭活2
24、4 h后37水解1 h,即成灭活病毒液。取灭活CDV、CPV和RABV用DMEM培养基15稀释后分别接种VDS、F81和BHK-21细胞,细胞置37培养 85 龚成燕等:狂犬病、犬瘟热和犬细小病毒病三联灭活疫苗免疫效果评价第 31 卷第 3 期3 d后再传1代,观察3种细胞有无细胞病变,未见细胞病变即判定病毒灭活合格。将MONTANIDE GEL 02、ADJ-801(W)和Al(OH)33种佐剂分别与灭活病毒液(RABVCDVCPV=111)按14比例混合均匀,制备成三联灭活疫苗,保存于4备用。选取CDV、CPV和RABV抗原和抗体均为阴性的健康6周龄比格犬15只,每只皮下注射疫苗3 mL,
25、连续观察至第14 d,每天记录是否出现局部或全身不良反应(表1)。1.6 比格犬免疫试验 选取RABV、CDV、CPV抗原和抗体均为阴性的6周龄比格犬30只,连续免疫制备的三联疫苗3次,每次每只接种1 mL,每次间隔4周,并在每次免疫前和最后一次免疫后4周采集比格犬后肢静脉血液于促凝管中,分离血清于-20备用(表2)。表 1 比格犬疫苗接种分组及相关信息Table 1 Vaccination group and related information of Beagles组别Groups注射途径Injection ways剂量(只)Dose per animal免疫只数Immune numbe
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