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类型实验报告等电点聚焦测蛋白质等电点.doc

  • 上传人:w****g
  • 文档编号:3119691
  • 上传时间:2024-06-18
  • 格式:DOC
  • 页数:4
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    关 键  词:
    实验 报告 聚焦 蛋白质
    资源描述:
    . 等电点聚焦测蛋白质等电点 一. 实验目的 1. 了解蛋白质的两性解离性质和等电点聚焦的原理; 2. 学习测定蛋白质等电点的方法并掌握圆盘电泳技术。 二. 实验原理 等电点聚焦(IEF)是在电场中分离蛋白质技术的一个重要发展,IEF实质就是在稳定的pH梯度中按等电点的不同分离两性大分子的平衡电泳方法。 在电场中充有两性载体和抗对流介质,当加上电场后,由于两性载体移动的结果,在两极之间逐步建立起稳定的pH梯度,当蛋白质分子或其它两性分子存在于这样的pH梯度中时,这种分子便会由于其表面电荷在此电场中运动,并最终到达一个使其表面静电荷为0的区带,这时的pH则是这种分子的pI。聚焦在等电点的分子也会不断地扩散。一旦偏离其等电点后,由于pH环境的改变,分子又立即得到正电荷或负电荷,从而又向pI迁移。因此,这些分子总是处于不断地扩散和抗扩散的平衡之中,在pI处得以“聚焦”。 三. 实验步骤 1.凝胶制备 按表1的比例配制4ml工作胶液,在真空干燥器中抽气10min。每组4管,每管加胶液1.8ml。混匀后立即注入到已准备好的凝胶管中,胶液加至离管顶部1cm处,在胶面上再覆盖3mm厚的水层,应注意不要让水破坏胶的表面,室温下放置20~30min即可聚合。 表1 凝胶工作液配比 凝胶母液(丙烯酰胺30%:甲叉双丙烯酰胺0.8%) 1ml 10%过硫酸铵 0.02ml 水 2.68ml 载体两性电解液 0.15ml 蛋白样品液 0.1ml,0.05ml TEMED 0.02ml 2.电泳 吸去凝胶柱表面上的水层,将凝胶管垂直固定于圆盘电泳槽中。于电泳槽下槽加入0.2%的500ml硫酸作正极;上槽加入0.5%的800ml乙醇胺作负极打开电源,将电压恒定为300V,因为聚焦过程是电阻不断加大的过程,故聚焦电泳过程中,电流将不断下降,降至稳定时,即表明聚焦已完成,继续电泳约30min后,停止电泳,全程约需3h。 3.剥胶 电泳结束后,取下凝胶管,用水洗去胶管两端的电极液,按照柱状电泳剥胶的方法取出胶条,以胶条的正极为“头”,负极为“尾”,正极端呈酸性,负极端呈碱性。剥离后,量出并记录凝胶的长度。 4. 固定 取其中的凝胶条3根置于一个小培养皿内,倒入10%放在三氯乙酸固定液中固定,约半小时后,即可看到胶条内蛋白质的白色沉淀带。固定完毕,倒出固定液用直尺量出胶条长度L1和正极端到蛋白质白色沉淀带中心,即聚焦部位的长度L2。 5. pH梯度的测量 切段法:将未经固定的1根胶条,按照从正极端(酸性端)到负极端(碱性端)的顺序切成相等的10段,按次放人有标号的、装有0.0lM氯化钾的试管中,浸泡过夜。然后用pH计测出每管浸泡液的pH并记录。 四. 实验结果 1.凝胶条的长度及染色蛋白带的位置 凝胶条编号 1 2 3 4 固定前的长度L0 7.8cm 7.8cm 7.4cm 7.7cm 固定后的长度L1 7.7cm 7.8cm 7.4cm 未染色,测pH梯度 蛋白带距酸端距离L2 1.3cm 1.4cm 1.3cm 蛋白质距正极实际长度LS 1.32cm 1.4cm 1.3cm 2.pH梯度表及其相应标准曲线 标号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 长度/cm 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 0.77 pH值 3.05 3.72 5.04 6.76 7.24 7.99 8.62 9.58 10.14 10.18 蛋白质样品等电点的计算 : 蛋白质聚焦部位距凝胶条正极端的实际长度=固定后的蛋白区带中心距凝胶条正极端的距离*固定前凝胶条长度/ 固定后凝胶条长度 则将上述数据代入LS=L2*,求出蛋白质距正极实际长度LS分别为1.3cm、1.4cm、1.3cm。由凝胶条1、2和3及其相应蛋白带距离可计算出蛋白带距酸端的平均距离:(1.3+1.4+1.32)/3=1.34 ②计算出蛋白质聚焦部位距凝胶条正极端的实际长度后,直接从pH梯度曲线上求出该蛋白质等电点。 得出其标准公式为:y = 0.8372x + 2.6273 则待测蛋白质的等电点为0.8372*1.34+2.6273=3.75 五. 实验分析及讨论 (1)实验结果测得的样品蛋白的等电点为3.75,通过查常见蛋白质等电点参考值表格可知,其为β-卵黄脂磷蛋白。由于记录凝胶长度及蛋白质距正极的距离存在读数误差,所以也可能是伴花生球蛋白(3.7-5.0)。 (2) 等电点聚焦测蛋白质等电点分辨率高,可将等电点相差0.01—0.02pH单位的蛋白质分开。不像一般电泳易受扩散作用影响,使区带越走越宽;聚焦电泳则能抵消扩散作用,使区带越走越窄。同时,很稀的样品也可以聚焦而浓缩,实验操作起来也简单方便。 (3) 其存在其不足之处是在实验操作过程当中,读数的取值、样品溶液是否含盐、在等电点时蛋白质是否溶解或变性,都会影响实验结果。因为盐会增大电流量,产生热量;盐分子移至两极时,将产生酸或碱,中和两性电解质。由于这些影响因素的存在,个人认为利用这一种方法还不足以鉴定出蛋白质种类。 附 常见蛋白质等电点参考值 4 / 4
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