RAD-seq技术研究鹅掌...属种源遗传多样性和遗传结构_潘文婷.pdf
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1、第 58 卷 第 4 期2 0 2 2 年 4 月林业科学SCIENTIASILVAESINICAEVol.58,No.4Apr.,2 0 2 2doi:10.11707/j.1001-7488.20220408收稿日期:2021-04-16;修回日期:2021-11-14。基金项目:中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金(CAFYBB2016QA015)。厉月桥为通讯作者。RAD-seq 技术研究鹅掌楸属种源遗传多样性和遗传结构潘文婷孙建军原勤勤张利利邓康桥厉月桥(中国林业科学研究院亚热带林业实验中心分宜 336600)摘要:【目的】揭示鹅掌楸属遗传结构和地理变异特点,为鹅掌楸属遗传资源
2、的保存、利用及改良提供依据。【方法】以 9 个鹅掌楸种源 97 份样本和 4 个北美鹅掌楸种源 46 份样本为材料,采用 RAD-seq 测序鉴定各样本SNP 标记,计算观测杂合度(Ho)、期望杂合度(He)、核苷酸多样性()和基因分化系数(Gst)等遗传统计量指标,分析鹅掌楸属种源遗传多样性和遗传结构。【结果】在 143 份鹅掌楸属样本中共鉴定出 4 454 个高质量的 SNP 标记;鹅掌楸种源之间存在较大的遗传分化以及中水平的基因流(Gst=0.241 9、Nm=0.805 1),北美鹅掌楸种源之间存在很大的的遗传分化以及低水平的基因流(Gst=0.388 60.25、Nm=0.397 0
3、);通过结构分析将 13 个鹅掌楸属种源分为 3 个类群,其中 9 个中国的鹅掌楸种源被分为东部种源群(即类群 2)和西部种源群(即类群 1),类群 3 均为北美鹅掌楸,遗传多样性顺序为:类群 3类群 1类群 2。【结论】鹅掌楸属遗传结构的形成与其地理隔离和片段化分布有关,且存在由于小群体效应和片段化影响导致的濒危现象,本研究开发的 SNP 标记可为鹅掌楸属分子鉴定、种质创新及种质资源收集与保存提供参考。关键词:鹅掌楸属;RAD 测序;遗传多样性;遗传结构中图分类号:S722.3+4;S718.46文献标识码:A文章编号:1001-7488(2022)04-0074-08Analysis of
4、 Genetic Diversity and Structure in Different Provenances of Liriodendron by RAD-seq TechniquePan WentingSun JianjunYuan QinqinZhang LiliDeng KangqiaoLi Yueqiao(Subtropical Experimental Center,CAFFenyi 336600)Abstract:【Objective】This study aims to reveal the genetic structure and geographic variatio
5、n characteristics of Liriodendron populations,in order to provide a basis for the conservation,utilization and improvement of genetic resources of Liriodendron.【Method】A total of 97 samples derived from 9 provenances of Liriodendron chinensis and 46 samples derived from 4 provenances of L.tulipifera
6、 were collected.The SNP markers of the samples were identified by RAD-Seq sequencing.The observed heterozygosity(Ho),expected heterozygosity(He),nucleotide diversity(),gene differential coefficient(Gst)and other genetic statistics were calculated to analyze the genetic diversity and genetic structur
7、e of Liriodendron provenances.【Result】A total of 4 454 high quality SNP markers were identified in the 143 samples of Liriodendron.There were Liriodendron maintained moderate genetic differentiation and medium level gene flow among provenances of L.chinensis(Gst=0.241 9,Nm=0.805 1).There were large
8、genetic differentiation and low level gene flow among L.tulipifera provenances(Gst=0.388 60.25,Nm=0.397 0).The 13 Liriodendron provenances were divided into 3 subgroups by population structure analysis.Among them,9 provenances of L.chinensis were divided into eastern provenances(group 2)and western
9、provenances(group 1),and the other provenances belonged to group 3 and they are all L.tulipifera.The order of genetic diversity was:group 3 group 1 group 2.【Conclusion】The formation of genetic structure of Liriodendron is related to its geographical isolation and fragmented distribution,and there ar
10、e endangered phenomena caused by small population effect and fragmentation.The SNP markers developed in this study can provide a reference basis for molecular identification,germplasm innovation and collection and preservation of germplasm resources of Liriodendron.Key words:Liriodendron;RAD-seq;gen
11、etic diversity;genetic structure第 4 期潘文婷等:RAD-seq 技术研究鹅掌楸属种源遗传多样性和遗传结构木 兰 科(Magnoliaceace)鹅 掌 楸 属(Liriodendron)为落叶大乔木,叶大形似马褂,故又称之为“马褂木”,欧洲人称其为“郁金香树”,是珍贵用材和优良观赏树种。现仅存两个种,即北美鹅掌楸(Liriodendron tulipifera)和鹅掌楸(Liriodendron chinense),为孑遗树种,前者生长于美国东部及加拿大南部的阔叶林中,从平原到山区呈连续分布,遗传资源十分丰富;后者大多零星分布于我国长江流域以南的亚热带中、低
12、山区,常混生于常绿或落叶阔叶林中(郝日明等,1995),虽分布范围较大且遗传多样性良好,但因种群数量稀少,种群片段化严重,天然更新不良,处于濒危状态,已被列入我国二级珍稀濒危保护植物(王章荣,2005)。鹅掌楸属中的这两个种是典型的东亚-北美间断分布“种对”(Vicariad Species Pairs)(Parks et al.,1990),是植物群体遗传学和分子 系 统发育地理学的理想材料(李康琴,2013)。随分子标记研究方法的增多,对鹅掌楸分子育种研究也逐渐完善,王晓阳等(2011)利用 SSR 技术研究鹅掌楸苗期生长杂种优势;李康琴(2013)基于SSR 技术对鹅掌楸属进行群体遗传结
13、构及分子系统地理学 研 究;罗 群 凤 等(2015)采 用 同 源 克 隆 和RACE 技术克隆北美鹅掌楸的查尔酮合成酶基因(LtCHS),并对其进行生物信息学及组织表达进行了分析;祁荔(2017)利用 AFLP 及 SSR 分子标记构建鹅掌楸遗传图谱及重要性状 QTL 初步定位。近年来基于全基因组酶切位点相关的简化基因组测序基础 上 发 展 出 来 了 二 代 测 序 技 术 RAD-seq(Restriction-site associated DNA sequencing),该技术由 Miller 等(2007)提出,主要利用酶切、序列捕获降低基因 组 复 杂度从而获得部分 基 因 组
14、 序 列 信 息(Wang et al.,2017;Jrmy et al.,2020),作为一种快速有效的手段,实现大规模的分子标记开发,既节约成本又节省时间,已成功应用于 SNP 标记的开发、动植物重要经济性状的 QTL 定位、生物进化等研究领域(Feng et al.,2020;Li et al.,2020)。陆叶等(2019)利用 RRAD-seq 技术开展了鹅掌楸基因组 SNP 标记开发,最终获得 3 501 个候选 SNP 标记;Sheng 等(2021)利用 RAD-seq 技术分析了鹅掌楸Myb 基因家族的表征及其在非生物胁迫应答中的作用,可见 RAD-seq 技术能提供更多 S
15、NP 标记,有效补充了鹅掌楸遗传信息较少这一问题,但有关鹅掌楸属群体遗传结构和遗传分化的研究较少。开展群体结构和遗传分化的研究能精准评估遗传多样性和制定科学有效的种质资源保护策略,李云飞等(2019)采用 RAD-seq 技术开发了 85 种杜鹃花属植物的高质量 SNP 位点,通过高通量测序探讨分类,在亚属水平的分类取得很好的效果。黄承玲等(2021)采 用 RAD-seq 技 术 对 34 种 杜 鹃 花 属(Rhododendron)植物进行分类,证实了 RAD-seq 技术在复杂植物类群的物种分类方面比传统分子标记具有明显优势。本研究利用 RAD-seq 测序技术,以9 个中国鹅掌楸和
16、4 个北美鹅掌楸种源为研究材料,通过高通量测序,对 13 个鹅掌楸属种源 143 份样本进行了遗传多样性、遗传变异、遗传分化以及群体基因交流等分析,揭示鹅掌楸属各种源亲缘关系,以期为鹅掌楸属分子鉴定、种质创新及种质资源收集与保存提供参考。1材料与方法1.1试验材料试验材料共有 13 个鹅掌楸属种源,其中 9 个来自中国 7 个省,另外 4 个来自美国,相关种源地理信息详见表 1。所有种源种植在中国林业科学研究院亚热带林业实验中心年珠实验林场鹅掌楸种源试验林中。分别于 2016 年 10 月和 2017 年 5 月进行采样,每个种源随机采取 10 14 株树,每株树取 5 6片叶,共采集了 14
17、3 份鹅掌楸属样本,其中有 97 个样本采自 9 个中国鹅掌楸种源,还有 46 个样本采自4 个北美鹅掌楸种源。样本用自封袋装好并倒入硅胶干燥、保存。1.2基因组 DNA 的制备全部 143 份鹅掌楸属样本的基因组 DNA 采用改良的 CTAB 法(Liu et al.,2008)提取,用 1.0%琼脂糖凝胶检测 DNA 质量。1.3酶切建库利用 RAD-seq 技术对 143 份鹅掌楸属样本的基因组 DNA 进行简化测序。采用限制性内切酶 AvaII与 MspI 酶 切 组 合 对 全 基 因 组 DNA 完 全 酶 切(Peterson et al.,2012),(插入片段范围:500 6
18、00 bp,将酶切产物进行 5末端修复,同时对 5末端进行磷酸化修饰,3末端加 A,使之与接头 5端 T 互补,提高接头连接效率,阻止接头自连。然后连接测序接头,将连接产物锚定在 flowcell 上,进行桥式扩增。用琼脂糖凝胶电泳进行片段大小选择,通过PCR 扩 增,增 大 文 库 量,建 好 的 文 库 用 Illumina HiSeq X10 进行测序。57林业科学58 卷表 1各参试种源地理信息及参试数量Tab.1Geographic information and sample number of 13 provenances in the experiment种源Provenanc
19、e种源地Provenance region北纬Latitude东经Longitude海拔Elevation/m样品数Number of samplesXY四川叙永Sichuang Xuyong28.20N105.5E70090010EX湖北鄂西Hubei Exi30.30N109.0E1 1001 30011MN贵州陌南Guizhou Monan26.80N109.5E9501 15011LY湖南浏阳Hunan Liuyang28.05N113.9E1 0001 20011SZ湖南桑植Hunan Sangzhi29.15N110.2E1 1001 30011LS江西庐山Jiangxi Lush
20、an29.53N116.0E1 0001 20010WYS江西武夷山Jiangxi Wuyishan27.92N117.8E9001 10010MSL密苏里州Missouri37.60N91.5W60080011LYS路易斯安纳州Louisiana31.00N93.6W010010BK北卡罗来纳州North Carolina35.13N80.1W1 0001 20012NK南卡罗来纳州South Carolina34.50N81.8W10030014YN云南勐腊Yunnan Mengla21.40N101.6E60080011DBS大别山舒城Dabieshan Shucheng31.13N11
21、8.2E1 3501 550111.4统计分析对原始数据进行识别、过滤、质量评估,再进行单样本测 序 数 据 的 RAD 标 记 开 发、样 本 群 体 的RAD 标记开发、多态性标记 SNPs 开发等,最后开展群体多样性分析,包括进化树构建及群体结构分析等。主 要 通 过 Stacks 软 件(http:creskolab.uoregon.edu/stacks/)(Catchen et al.,2013)进 行RAD 标记开发。基因组经酶切处理打断为多个小片段,每个片段相当于一个标记位点,同一位点的序列通过相似性聚类,形成一个 Stack。每个 Stack 中存在数条高深度片段,其余全为低深
22、度片段。高深度片段即为潜在基因型,低深度片段可能由于测序错误导致。采 用Mega5.1软 件(http:www.atgc-montpellier.fr/phyml/)(Tamura et al.,2011)中 的Upgma 算法和 Neighbour-joining 分别构建 13 个种源的关系树和 143 份样本的进化树。通过 Admixture软件(Lexander et al.,2009)对 143 份样本的群体结构进行聚类分析,该软件运算速度快,创建 Plink(http:pngu.mgh.harvard.edu/purcell/plink/)的输入文件,用 Plink 进行 SNP
23、过滤,将样品的分群数(K 值)设定为 1-6 进行聚类,根据 CV error 最小值确定分群数。使 用 POPGENE 1.32 软 件(http:www.ualberta.ca/fyeh/download.htm.)(Yeh et al.,2000)计算观察杂合度(Ho)、期望杂合度(He)、核苷酸多样性()和基因分化系数(Gst)等主要遗传结构的度量参数。2结果与分析2.1RAD-seq 测序及质量评估本研究通过 RAD-seq 测序技术,完成 13 个鹅掌楸属种源的 143 份样本的测序,总碱基数为 396.95 Gb,样本平均获取的碱基数为 2.76 Gb;测得有效数据为 1 323
24、.17 Mb,样本平均获取的有效数据为9.21 Mb;共开发 RAD 标签 2 611 618 个,样本的平均标签数为 141 222 个,平均测序深度为 25.02 x(表 2)。所 测 序 列 GC 含 量 较 低(平 均 值 为26.51%),Q30 数据较高(平均值为 95.07%),表明错误率低,测序结果可靠。通过对样本间进行多态性分析,共得到高质量的 SNP 位点 4 454 个。67第 4 期潘文婷等:RAD-seq 技术研究鹅掌楸属种源遗传多样性和遗传结构表 2RAD-seq 测序数据统计Tab.2Statistics of RAD-seq sequencing data of
25、 13 provenances种源Provenance总碱基数Total nucleotides(Gb)有效数据Clean reads(Mb)RAD 标记数RAD tag测序深度Sequencing depth(x)XY1.775.90129 42016.29EX2.468.19140 08020.19MN4.2014.01155 03034.20LY1.946.46147 27017.77SZ1.414.70157 95013.70LS4.3714.57156 65035.74WYS2.719.02128 70025.34MSL3.8912.97136 12039.76LYS3.7512.5
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